pmid: "32467898"
title: "Novos e Interessantes Fungos. 2."
authors: "Crous PW, Schumacher RK, Akulov A, Thangavel R, Hernández-Restrepo M, Carnegie AJ, Cheewangkoon R, Wingfield MJ, Summerell BA, Quaedvlieg W, Coutinho TA, Roux J, Wood AR, Giraldo A, Groenewald JZ"
journal: "Fungal systematics and evolution"
pubdate: "2019 Jun"
doi: "10.3114/fuse.2019.03.06"
source: "PMC Full Text"
Novos e Interessantes Fungos. 2.
Autores
Crous PW, Schumacher RK, Akulov A, Thangavel R, Hernández-Restrepo M, Carnegie AJ, Cheewangkoon R, Wingfield MJ, Summerell BA, Quaedvlieg W, Coutinho TA, Roux J, Wood AR, Giraldo A, Groenewald JZ
Periodico
Fungal systematics and evolution (2019 Jun)
Conteudo
Fungos Novos e Interessantes. 2
Uma ordem, sete famílias, 28 novos gêneros, 72 novas espécies, 13 novas combinações, quatro epítipos e interessantes novos registros de hospedeiros e/ou geográficos são introduzidos neste estudo. Pseudorobillardaceae é introduzida para Pseudorobillarda (com base em P. phragmitis). Novos gêneros incluem: Jeremyomyces (com base em J. labinae) em galhos de Salix alba (Alemanha); Neodothidotthia (com base em N. negundinicola) em Acer negundo (Ucrânia); Neomedicopsis (com base em N. prunicola) em galhos caídos de Prunus padus (Ucrânia); Neophaeoappendicospora (com base em N. leucaenae) em Leucaena leucocephala (França) (incl. Phaeoappendicosporaceae); Paradevriesia (incl. Paradevriesiaceae) (com base em P. americana) do ar (EUA); Phaeoseptoriella (com base em P. zeae) em folhas de Zea mays (África do Sul); Piniphoma (com base em P. wesendahlina) em detritos de madeira de Pinus sylvestris (Alemanha); Pseudoconiothyrium (com base em P. broussonetiae) em ramo de Broussonetia papyrifera (Itália); Sodiomyces (com base em S. alkalinus) do solo (Mongólia), e Turquoiseomyces (incl. Turquoiseomycetales e Turquoiseomycetaceae) (com base em T. eucalypti) em folhas de Eucalyptus leptophylla (Austrália); Typhicola (com base em T. typharum) em folhas de Typha sp. (Alemanha); Xenodevriesia (incl. Xenodevriesiaceae) (com base em X. strelitziicola) em folhas de Strelitzia sp. (África do Sul). Novas espécies incluem: Bacillicladium clematidis em ramo de Clematis vitalbae (Áustria); Cercospora gomphrenigena em folhas de Gomphrena globosa (África do Sul); Cyphellophora clematidis em Clematis vitalba (Áustria); Exophiala abietophila em casca de Abies alba (Noruega); Exophiala lignicola em tronco descorticado caído de Quercus sp. (Ucrânia); Fuscostagonospora banksiae em Banksia sp. (Austrália); Gaeumannomycella caricicola em folha morta de Carex remota (Alemanha); Hansfordia pruni em galho de Prunus persica (Itália) (incl. Hansfordiaceae); Microdochium rhopalostylidis em Rhopalostylis sapida (Nova Zelândia); Neocordana malayensis em folhas de Musa sp. (Malásia); Neocucurbitaria prunicola em galhos caídos de Prunus padus (Ucrânia); Neocucurbitaria salicis-albae em galho de Salix alba (Ucrânia); Neohelicomyces deschampsiae na base do colmo da bainha foliar morta de Deschampsia cespitosa (Alemanha); Pararoussoella juglandicola em galho de Juglans regia (Alemanha); Pezicula eucalyptigena em folhas de Eucalyptus sp.
(África do Sul); Phlogicylindrium dunnii em folhas de Eucalyptus dunnii (Austrália); Phyllosticta hagahagaensis em serapilheira de Carissa bispinosa (África do Sul); Phyllosticta austroafricana em manchas foliares de hospedeiro arbóreo decíduo não identificado (África do Sul); Pseudosigmoidea alnicola em serapilheira de Alnus glutinosa (Alemanha); Pseudoteratosphaeria africana em mancha foliar em hospedeiro não identificado (Angola); Porodiplodia vitis em ramos de Vitis vinifera (EUA); Sodiomyces alkalinus do solo (Mongólia), Sodiomyces magadiensis e Sodiomyces tronii do solo (Quênia), Sympodiella quercina em folha caída de Quercus robur (Alemanha) e Zasmidium hakeicola em folhas de Hakea corymbosa (Austrália). Epítipos são designados para: Cryptostictis falcata em folhas de E. alligatrix (Austrália), Hendersonia phormii em folhas de Phormium tenax (Nova Zelândia), Sympodiella acicola em acículas de Pinus sylvestris (Holanda) e Sphaeria scirpicola var. typharum em folha de Typha sp. (Alemanha). Vários táxons originalmente descritos de rochas são validados neste estudo. Novos táxons incluem: Extremaceae fam. nov., e novos gêneros, Arthrocatena, Catenulomyces, Constantinomyces, Extremus, Hyphoconis, Incertomyces, Lapidomyces, Lithophila, Monticola, Meristemomyces, Oleoguttula, Perusta, Petrophila, Ramimonilia, Saxophila e Vermiconidia. Novas espécies incluem: Arthrocatena tenebrosa, Catenulomyces convolutus, Constantinomyces virgultus, C. macerans, C. minimus, C. nebulosus, C. virgultus, Exophiala bonariae, Extremus adstrictus, E. antarcticus, Hyphoconis sterilis, Incertomyces perditus, Knufia karalitana, K. marmoricola, K. mediterranea, Lapidomyces hispanicus, Lithophila guttulata, Monticola elongata, Meristemomyces frigidus, M. arctostaphyli, Neodevriesia bulbillosa, N. modesta, N. sardiniae, N. simplex, Oleoguttula mirabilis, Paradevriesia compacta, Perusta inaequalis, Petrophila incerta, Rachicladosporium alpinum, R. inconspicuum, R. mcmurdoi, R. monterosanum, R. paucitum, Ramimonilia apicalis, Saxophila tyrrhenica, Vermiconidia antarctica, V. calcicola, V. foris e V. flagrans.
INTRODUÇÃO
Este artigo representa a segunda contribuição para a série de Fungos Novos e Interessantes (NIF), com o objetivo de expandir o conhecimento sobre a biodiversidade fúngica e a conservação de fungos. A série concentra-se em novos registros, novas conexões sexuais-assexuais, consolidação de gêneros sexuais e assexuais após o abandono da nomenclatura dupla para fungos, e a descrição de táxons fúngicos, ou notas relacionadas a observações interessantes. A série representa um recurso regular da revista Fungal Systematics and Evolution (www.FUSE-journal.org). Espera-se que forneça um recurso atrativo para micologistas publicarem novas espécies únicas ou destacarem a relevância de fungos importantes. Micologistas e outros pesquisadores interessados em contribuir para futuras edições do NIF são encorajados a entrar em contato com o Editor-Chefe (p.crous@westerdijkinstitute.nl).
MATERIAIS E MÉTODOS
Isolados
As amostras foram colocadas em câmaras úmidas e incubadas à temperatura ambiente por 1–3 dias. Colônias conidiais únicas foram cultivadas a partir de conidiomas esporulantes em placas de Petri contendo ágar de extrato de malte a 2 % (MEA), conforme descrito por). Tecidos foliares e caulinares contendo ascomas foram embebidos em água por aproximadamente 2 h, após o que foram fixados na parte inferior das tampas de placas de Petri contendo MEA. Após a ejeção dos ascósporos na superfície do MEA, os padrões de germinação foram determinados após 24 h, e culturas de ascósporo único ou conídio foram estabelecidas seguindo o método descrito por. As colônias foram subcultivadas em ágar batata-dextrose a 2 % (PDA), ágar aveia (OA), MEA, agulhas de pinheiro autoclavadas em ágar água de torneira a 2 % (PNA) ou folhas de banana autoclavadas (BLA), e incubadas a 25 °C sob luz ultravioleta próxima contínua para promover a esporulação. Cepas de referência e espécimes dos fungos estudados são mantidos na coleção de culturas CBS (CBS) do Instituto Westerdijk de Biodiversidade Fúngica (WI), Utrecht, Países Baixos.
Extração de DNA, amplificação (PCR) e filogenia
O micélio fúngico (Tabela 1) foi raspado da superfície de ágar das culturas com um bisturi estéril e o DNA genômico foi isolado usando o Wizard® Genomic DNA Purification Kit (Promega Corporation, WI, EUA) seguindo os protocolos do fabricante. Nove loci foram amplificados seguindo protocolos publicados anteriormente. Primeiro, o gene nrRNA 28S (LSU) e as regiões espaçadoras transcritas internas com o gene nrRNA 5.8S interveniente (ITS) do operon nrDNA foram sequenciados para todos os isolados incluídos neste estudo (para condições de amplificação, veja). Outros loci foram sequenciados para várias espécies ou gêneros usando primers e condições específicas para esses grupos de fungos (Tabela 1). A amplificação do gene parcial da segunda maior subunidade da RNA polimerase II dependente de DNA (rpb2), do gene parcial do fator de elongação 1-alfa (tef1) e do gene parcial da beta-tubulina (tub2) foi realizada, enquanto a amplificação do gene parcial da actina (act), do gene parcial da calmodulina (cmdA), do gene parcial da gliceraldeído-3-fosfato desidrogenase (gapdh) e do gene parcial da histona H3 (his3) foi realizada. Os fragmentos resultantes foram sequenciados em ambas as direções usando os respectivos primers de PCR e o BigDye Terminator Cycle Sequencing Kit v. 3.1 (Applied Biosystems Life Technologies, Carlsbad, CA, EUA); os amplicons de sequenciamento de DNA foram purificados através de colunas Sephadex G-50 Superfine (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO) em placas MultiScreen HV (Millipore, Billerica, MA). As reações de sequenciamento purificadas foram analisadas em um Analisador de DNA Applied Biosystems 3730xl (Life Technologies, Carlsbad, CA, EUA). As sequências de DNA foram analisadas e as sequências de consenso foram calculadas usando SeqMan Pro v. 13 (DNASTAR, Madison, WI, EUA).
As sequências para cada região gênica foram submetidas a buscas megablast para identificar sequências intimamente relacionadas no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI. Os resultados são fornecidos como parte das notas das espécies ou como árvores filogenéticas selecionadas. Árvores filogenéticas foram geradas usando análises bayesianas realizadas com MrBayes v. 3.2.6 para as árvores gerais e análises de Máxima Parcimônia realizadas com PAUP v. 4.0b10 conforme explicado para as árvores de gênero e espécie. Todas as árvores resultantes foram impressas com Geneious v. 11.0.3 (http://www.geneious.com,) e o layout das árvores foi feito no Adobe Illustrator v. CC 2017. Medidas estatísticas calculadas incluíram comprimento da árvore (TL), índice de consistência (CI), índice de retenção (RI) e índice de consistência reescalonado (RC).
Preparações de lâminas foram montadas em ácido lático, fluido de montagem de Shear ou água, a partir de colônias esporulando em MEA, PDA, PNA, BLA ou OA. Secções através de conidiomas foram feitas manualmente. As observações foram realizadas com um microscópio de dissecação Nikon SMZ25 e com um microscópio de luz Zeiss Axio Imager 2 usando iluminação de contraste de interferência diferencial (DIC) e imagens registradas em uma câmera Nikon DS-Ri2 com software associado. Características das colônias e produção de pigmento foram anotadas após 2–4 semanas de crescimento em MEA, PDA e OA incubadas a 25 °C. As cores das colônias (superfície e reverso) foram pontuadas usando as cartas de cores de. Sequências derivadas neste estudo foram depositadas no GenBank (Tabela 1), o alinhamento no TreeBASE (www.treebase.org; número de estudo S23853), e novidades taxonômicas no MycoBank (www.MycoBank.org).
RESULTADOS
Filogenia
Filogenia de LSU de Dothideomycetes (Fig. 1): O alinhamento continha 254 isolados e Helotium subcorticale (CBS 248.62, GenBank MH869740.1) foi usado como grupo externo. O alinhamento final continha um total de 809 caracteres usados para as análises filogenéticas, incluindo lacunas de alinhamento. O alinhamento continha um total de 392 padrões de sítios únicos. Com base nos resultados do MrModelTest, frequências de base dirichlet e o modelo GTR+I+G foi usado para a análise bayesiana. As análises bayesianas geraram 133 802 árvores, das quais 100 352 foram amostradas após 25 % das árvores serem descartadas como burn-in. Os valores de probabilidade posterior (PP) superiores a 0,84 são plotados na árvore (Fig. 1).
Filogenia de LSU de Eurotiomycetes (Fig. 2): O alinhamento continha 71 isolados e Saccharata proteae (CBS 119218, GenBank EU552145.1) foi usado como grupo externo. O alinhamento final continha um total de 772 caracteres usados para as análises filogenéticas, incluindo lacunas de alinhamento. O alinhamento continha um total de 265 padrões de sítios únicos. Com base nos resultados do MrModelTest, frequências de base dirichlet e o modelo GTR+I+G foi usado para a análise bayesiana. As análises bayesianas geraram 30 502 árvores, das quais 22 878 foram amostradas após 25 % das árvores serem descartadas como burn-in. Os valores de probabilidade posterior (PP) superiores a 0,84 são plotados na árvore (Fig. 2).
Filogenia de LSU de Lecanoromycetes e Leotiomycetes (Fig. 3): O alinhamento continha 42 isolados e Saccharata proteae (CBS 119218, GenBank EU552145.1) foi usado como grupo externo. O alinhamento final continha um total de 838 caracteres usados para as análises filogenéticas, incluindo lacunas de alinhamento. O alinhamento continha um total de 222 padrões de sítios únicos. Com base nos resultados do MrModelTest, frequências de base dirichlet e o modelo GTR+I+G foi usado para a análise bayesiana. As análises bayesianas geraram 9 102 árvores, das quais 6 828 foram amostradas após 25 % das árvores serem descartadas como burn-in. Os valores de probabilidade posterior (PP) superiores a 0,84 são plotados na árvore (Fig. 3).
Sordariomycetes filogenia LSU (Fig. 4): O alinhamento continha 174 isolados e Saccharata proteae (CBS 119218, GenBank EU552145.1) foi utilizado como grupo externo. O alinhamento final continha um total de 778 caracteres utilizados para as análises filogenéticas, incluindo lacunas de alinhamento. O alinhamento continha um total de 334 padrões de sítios únicos. Com base nos resultados do MrModelTest, foram utilizadas frequências de base de Dirichlet e o modelo GTR+I+G para a análise bayesiana. As análises bayesianas geraram 161 202 árvores, das quais 120 902 foram amostradas após 25 % das árvores serem descartadas como burn-in. Os valores de probabilidade posterior (PP) superiores a 0,84 estão plotados na árvore (Fig. 4).
Filogenias de espécies: Análises filogenéticas específicas foram realizadas para espécies selecionadas e as filogenias resultantes são discutidas nas notas das espécies, quando aplicável. Estatísticas associadas a essas filogenias são fornecidas nas legendas das figuras.
Taxonomia
Amycosphaerella africana (Crous & M.J. Wingf.) Quaedvl. & Crous, Persoonia 33: 23. 2014. Fig. 5.
Basônimo: Mycosphaerella africana Crous & M.J. Wingf., Mycologia 88: 450. 1996.
In vitro. Ascomas pseudoteciais, erumpentes a superficiais em ágar, pretos, globosos, 70–90 µm diâm; ostíolo apical; parede de 2–4 camadas de textura angularis marrom-média. Ascos aparafisados, fasciculados, bitunicados, estreitamente elipsoides a subcilíndricos, retos a curvados, 8-esporados, 28–37 × 6–7 µm. Ascósporos multisseriados, sobrepostos, hialinos, gutulados, de parede fina, retos a ligeiramente curvados, fusoides-elipsoides com extremidades obtusas, mais largos no meio da célula apical, mediana e 1-septados, não ou ligeiramente constritos no septo, afinando em direção a ambas as extremidades, 10–12 × (2–)2,5 µm.
Características de cultura: Colônias erumpentes, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margens lisas, lobadas, cobrindo a placa em 2 semanas. Em MEA superfície cinza-oliváceo pálido a cinza-oliváceo, reverso cinza-ferro; em PDA superfície cinza-oliváceo com manchas de cinza-oliváceo pálido, reverso cinza-ferro; em OA superfície cinza-oliváceo com manchas de branco sujo.
Material examinado: Nova Zelândia, Auckland, Bucklands Beach, 22 Wells Road, em folhas de Metrosideros excelsa (Myrtaceae), 2015, R. Thangavel, T16_03926C = CBS H-23809, cultura CBS 144635 = CPC 32782.
Notas: Amycosphaerella africana, que é o nome mais antigo para este táxon, é conhecida da Austrália (Buckinghamia sp., Eucalyptus grandis, E. globulus), Colômbia (E. grandis), Nova Zelândia (Dracaena draco), Portugal (E. globulus), África do Sul (E. cladocalyx, E. deanei, E. grandis, E. radiata, E. smithii, E. viminalis) e Zâmbia (E. globulus).
Com base em uma pesquisa megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, a sequência de ITS foi idêntica a Mycosphaerella buckinghamiae (GenBank EU707856.2; Identidades = 523/523 (100 %)), Amycosphaerella africana (como Mycosphaerella africana, GenBank AY626981.1; Identidades = 523/523 (100 %)), e relacionada a Pantospora guazumae (GenBank NR_119971.1; Identidades = 521/523 (99 %), sem gaps). Os hits mais próximos usando a sequência de LSU são Amycosphaerella africana (GenBank MH874180.1; Identidades = 785/785 (100 %)), Mycosphaerella buckinghamiae (GenBank EU707856.2; Identidades = 785/785 (100 %)), e Distomycovellosiella brachycarpa (como Passalora brachycarpa, GenBank GU214664.1; Identidades = 782/785 (99 %), 2 gaps (0 %)). A sequência tef1 foi idêntica a numerosas sequências de Amycosphaerella africana (por exemplo, como Mycosphaerella ellipsoidea, GenBank JX901653.1; Identidades = 394/394 (100 %)). Os hits mais próximos usando a sequência tub2 tiveram maior similaridade com Amycosphaerella africana (GenBank LC121222.1; Identidades = 571/572 (99 %), sem gaps), Pseudocercospora fijiensis (GenBank XM_007921924.1; Identidades = 566/616 (92 %), sem gaps), e Zymoseptoria tritici (GenBank XM_003856727.1; Identidades = 552/616 (90 %), sem gaps).
Bacillicladium clematidis Crous & R.K. Schumach., sp. nov. MycoBank MB829299. Fig. 6.
Etimologia: O nome reflete o gênero hospedeiro Clematis do qual foi isolado.
Micélio consistindo de hifas marrom-claras, lisas, ramificadas, com 1,5–2 µm de diâmetro, que se tornam inchadas e constritas nos septos na região conidiogênica, onde células individuais se tornam mais elipsoides e clavadas a globosas, com até 5 µm de diâmetro. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas nas hifas, marrom-claras, lisas, fialídicas, 0,5–1 × 1 µm, com colarinho inconspícuo, não alargado. Conídios solitários, elipsoides, marrom-claros, lisos, gutulados, asseptados, ápice obtuso, locus basal truncado, 0,5 µm de diâmetro; conídios mais velhos sofrendo conidiação microcíclica, (3–)4–4,5(–5) × (1,5–)2,5–3(–5) µm.
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, sem micélio aéreo e margem uniforme, lobada, atingindo 6 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, BDA e OA, superfície e reverso umbra.
Tipo: Áustria, Gaaden, ramo de Clematis vitalbae (Ranunculaceae), 21 abr. 2017, M. Mann & R.K. Schumacher, HPC 2101, RKS 102 (holótipo CBS H-23828, cultura ex-tipo CPC 33882 = CBS 145035).
Notas: Bacillicladium clematidis é filogeneticamente aparentado ao gênero Bacillicladium, com base em B. lobatum. Bacillicladium lobatum, que cresce em paredes de granito nuas, apresenta três diferentes hábitos de crescimento in vitro, dependendo do meio de cultivo, temperatura e idade da colônia. Mas morfologicamente, B. clematidis se encaixa adequadamente no gênero, compartilhando o crescimento leveduriforme preto em cultura.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Camptophora hylomeconis (GenBank NR_132881.1; Identidades = 352/402 (88 %), 20 lacunas (5 %)), Aphanophora eugeniae (GenBank NR_132829.1; Identidades = 394/466 (85 %), 24 lacunas (5 %)) e Ceramothyrium thailandicum (GenBank NR_137768.1; Identidades = 346/415 (83 %), 36 lacunas (8 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Bacillicladium lobatum (GenBank LT558703.1; Identidades = 822/863 (95 %), 2 lacunas (0 %)), Veronaea botryosa (GenBank MH875937.1; Identidades = 818/869 (94 %), 5 lacunas (0 %)) e Veronaea constricta (GenBank MH873920.1; Identidades = 811/862 (94 %), 5 lacunas (0 %)). Nenhuma correspondência significativa foi obtida quando a sequência tub2 foi usada em buscas blastn e megablast.
Beltrania rhombica Penz., Michelia 2(8): 474. 1882. Fig. 7.
Setas raramente observadas, eretas, marrom-escuras, de parede espessa, 7–10-septadas, retas a flexuosas, afinando para um ápice agudo, 200–300 × 4–5 µm, com célula basal lobada, 6–8 µm de diâmetro. Conidióforos eretos, não ramificados, marrom-médio, lisos, multisseptados, 50–300 × 4–7 µm. Células conidiogênicas terminais, marrom-claras, lisas, 15–30 × 4–6 µm, poliblásticas com vários dentículos de ponta achatada, 1,5–2 µm. Células separadoras marrom-claras, finamente rugosas, 7–13 × 5–7 µm, com vários dentículos apicais de ponta achatada, 1–2 µm de diâmetro. Conídios solitários, bicônicos, marrom-claros, asseptados, com uma faixa transversal mediana distinta de pigmento mais claro, (22–)24–27(–29) × (9–)10–11 µm; apêndice apical (10–)12–14(–15) × 1 µm, afinando para uma ponta agudamente arredondada.
Características de cultura: Colônias espalhadas, com micélio aéreo moderado, cobrindo a placa após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, superfície tijolo escuro, reverso fulvo; em PDA, superfície e reverso umbra; em OA, superfície umbra.
Material examinado: Chile, Llanos, em folhas de Eucalyptus urophylla (Myrtaceae), Jul. 2010, M.J. Wingfield, HPC 1412, CBS H-23264, cultura CPC 31775 = CBS 144521.
Notas: Beltrania pseudorhombica foi descrita a partir de agulhas de Pinus tabulaeformis coletadas em Pequim, China, e distinguida de B. rhombica, que possui setas mais longas (podem ter até 330 µm de comprimento) e conídios mais largos (15–30 × 7–14 µm). Não existe uma cepa ex-tipo para B. rhombica, e ela precisa ser recoletada em Citrus limon na Itália para esclarecer sua taxonomia.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Beltrania rhombica (GenBank MH857718.1; Identidades = 574/577 (99 %), sem lacunas), Beltrania pseudorhombica (GenBank NR_148074.1; Identidades = 574/577 (99 %), sem lacunas) e Beltrania querna (GenBank MH856775.1; Identidades = 530/538 (99 %), sem lacunas). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Beltrania rhombica (GenBank MF580252.1; Identidades = 823/823 (100 %), sem lacunas), Beltrania pseudorhombica (GenBank NG_058667.1; Identidades = 810/812 (99 %), sem lacunas) e Beltrania querna (GenBank MH875474.1; Identidades = 859/866 (99 %), 2 lacunas (0 %)).
Brevistachys lateralis L. Lombard & Crous, Persoonia 36: 183. 2016. Fig. 8.
Micélio consistindo de hifas hialinas, ramificadas, septadas, lisas, 2,5–3 µm de diâmetro (hifas com paredes espessas e marrons na região conidiogênica). Conidióforos eretos, simples, isolados, raramente em grupos, majoritariamente não ramificados, retos a levemente flexuosos, 2–3-septados, com paredes espessas em BDA, com paredes finas em OA, marrom oliváceo, verruculosos, 80–100 × 2,5–3,5 µm, com ápice bulboso, 6–7 µm de diâmetro, portando um verticilo de 10–12 células conidiogênicas. Células conidiogênicas terminais, alongadas, doliiformes a subcilíndricas, marrom claro, lisas, 9–12 × 4–4,5 µm, com colarinhos conspícuos. Conídios agregando-se em massa viscosa com exsudato marrom em BDA, mas em longas cadeias secas não ramificadas em OA (sem exsudato), dimórficos, conídios globosos, tornando-se marrom escuro e verruculosos, (4–)5(–6) µm de diâmetro, ou elipsoides, marrom claro, verruculosos, 9–10 × 4–5 µm.
Características culturais: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo esparso a moderado e margem lisa, lobada, atingindo 30 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em superfície de MEA cinza oliváceo, reverso umbra no centro, siena na região externa; em superfície de BDA ocráceo com pigmento açafrão difuso, reverso vináceo; em superfície de OA açafrão.
Material examinado: Tailândia, Província de Rachaburi, Bangkok, em folhas de Musa sp. (Musaceae), 2008, P.W. Crous, HPC 2156, CBS H-23831, cultura CPC 33958 = CBS 145062.
Notas: Brevistachys lateralis foi descrita a partir de folhas de Musa sp. coletadas em Queensland, Austrália. Este é o primeiro registro do fungo na Tailândia, onde também ocorre em folhas de Musa.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, os hits mais próximos usando a sequência ITS apresentaram maior similaridade com Brevistachys variabilis (GenBank NR_153620.1; Identidades = 531/542 (98 %), 6 lacunas (1 %)), Brevistachys globosa (GenBank NR_145070.1; Identidades = 555/569 (98 %), 4 lacunas (0 %)), e Brevistachys subsimplex (como Stachybotrys subsimplex, GenBank AF205439.1; Identidades = 558/573 (97 %), 2 lacunas (0 %)). Os hits mais próximos usando a sequência LSU são Brevistachys lateralis (GenBank KU846062.1; Identidades = 823/825 (99 %), 1 lacuna (0 %)), Brevistachys variabilis (GenBank KU846066.1; Identidades = 822/825 (99 %), 1 lacuna (0 %)), e Brevistachys subsimplex (como Stachybotrys subsimplex, GenBank AY489711.1; Identidades = 829/833 (99 %), sem lacunas). Os hits mais próximos usando a sequência cmdA apresentaram maior similaridade com Brevistachys lateralis (GenBank KU846027.1; Identidades = 360/360 (100 %), sem lacunas), Brevistachys variabilis (GenBank KU846030.1; Identidades = 360/360 (100 %), sem lacunas), Brevistachys globosa (GenBank KU846023.1; Identidades = 315/326 (97 %), 1 lacuna (0 %)) e Brevistachys ossiformis (GenBank KU846028.1; Identidades = 307/326 (94 %), 1 lacuna (0 %)), e hits distantes com Stachybotrys chlorohalonata (GenBank AY180255.1; Identidades = 125/133 (94 %), sem lacunas), Stachybotrys chartarum (GenBank KM231452.1; Identidades = 124/133 (93 %), sem lacunas), e Xenoacremonium recifei (GenBank KM231420.1; Identidades = 122/131 (93 %), sem lacunas). Os hits mais próximos usando a sequência rpb2 apresentaram maior similaridade com Brevistachys lateralis (GenBank KU846074.1; Identidades = 760/760 (100 %), sem lacunas), Brevistachys subsimplex (como Stachybotrys subsimplex, GenBank EF692519.1; Identidades = 762/785 (97 %), sem lacunas), e Brevistachys ossiformis (GenBank KU846075.1; Identidades = 738/760 (97 %), sem lacunas). Os hits mais próximos usando a sequência tef1 apresentaram maior similaridade com Brevistachys lateralis (GenBank KU846090.1; Identidades = 439/442 (99 %), sem lacunas), Brevistachys globosa (GenBank KU846085.1; Identidades = 423/442 (96 %), 4 lacunas (0 %)), e Brevistachys ossiformis (GenBank KU846091.1; Identidades = 412/443 (93 %), 10 lacunas (2 %)). Os hits mais próximos usando a sequência tub2 apresentaram maior similaridade com Brevistachys lateralis (GenBank KU846106.1; Identidades = 361/361 (100 %), sem lacunas), Brevistachys variabilis (GenBank KU846110.1; Identidades = 359/361 (99 %), sem lacunas), e Brevistachys globosa (GenBank KU846101.1; Identidades = 351/362 (97 %), 1 lacuna (0 %)).
Cercospora gomphrenigena Crous, sp. nov. MycoBank MB829300. Fig. 9.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero hospedeiro Gomphrena do qual foi isolado.
Manchas foliares circulares, 1–4 mm de diâmetro, marrom médio, com borda larga púrpura-avermelhada. Fascículos desenvolvendo-se apenas em câmaras úmidas. Conidióforos solitários, surgindo de um estroma fracamente desenvolvido de algumas células globoides marrons, subcilíndricos, marrom médio, lisos, flexuosos, multisseptados, até 800 µm de altura, 3–6 µm de diâmetro. Células conidiogênicas subcilíndricas, marrons, lisas, terminais e intercalares, 30–160 × 4–5 µm; cicatrizes espessadas, escurecidas e refringentes, 3–4 µm de diâmetro. Conídios solitários, aciculares, hialinos, lisos, flexuosos, multisseptados, ápice subobtuso, base truncada, 150–300 × 4–5 µm; hilos espessados, escurecidos e refringentes, 3–4 µm de diâmetro.
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem uniforme, lobada, atingindo 50 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, superfície cinza-fumaça, reverso escarlate com pigmento escarlate difuso; em PDA, superfície cinza-fumaça, reverso cinza-oliváceo; em OA, superfície cinza-oliváceo com manchas de branco sujo, com pigmento escarlate difuso.
Tipo: África do Sul, Província de Gauteng, Gauteng, em folhas de Gomphrena globosa (Amaranthaceae), 2010, P.W. Crous, HPC 1516 (holótipo CBS H-23803, cultura ex-tipo CPC 32470 = CBS 144613).
Notas: Uma filogenia de DNA para a maioria das espécies comuns de Cercospora conhecidas em cultura foi apresentada por, com genes de código de barras secundários tratados por. Cercospora gomphrenigena foi coletada de folhas de Gomphrena globosa na África do Sul em uma tentativa de resolver a identidade de Cercospora pretoriensis que ocorre neste hospedeiro (conídios estreitamente cilíndricos a subaciculares, 15–90 × 2–4,5 μm), da qual C. gomphrenigena é morfologicamente distinta, apresentando conídios muito mais longos e largos. É morfologicamente mais próxima de C. gomphrenae [conidióforos em fascículos pequenos e divergentes, 30–300 × 3–7 μm, células conidiogênicas com 10–30 μm de comprimento, conídios 30–300(–450) × 2–5 μm, 3–20-septados; Braun et al. 2015], mas é distinta por ter conidióforos e células conidiogênicas mais longos, cicatrizes mais largas e conídios mais largos.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos do GenBank do NCBI, a sequência de ITS foi idêntica a Cercospora dichondrae (GenBank MK039698.1; Identidades = 525/525 (100 %)), Cercospora beticola (GenBank MH424448.1; Identidades = 525/525 (100 %)) e Cercospora malayensis (GenBank MH129519.1; Identidades = 525/525 (100 %)). A sequência de LSU é idêntica às de numerosas espécies de Cercospora, por exemplo, Cercospora sesami (GenBank MK029365.1; Identidades = 783/783 (100 %)). Os hits mais próximos usando a sequência cmdA tiveram maior similaridade com Cercospora samambaiae (GenBank KT037463.1; Identidades = 448/448 (100 %)), Cercospora sp. G NV-2018 (GenBank MF681410.1; Identidades = 443/444 (99 %), sem lacunas) e Cercospora cyperina (GenBank KT193729.1; Identidades = 444/448 (99 %), sem lacunas). Os hits mais próximos usando a sequência his3 tiveram maior similaridade com Cercospora sp. 3 LO-2017 (GenBank KX522813.1; Identidades = 375/375 (100 %)), Cercospora kikuchii (GenBank KP825147.1; Identidades = 375/375 (100 %)) e Cercospora cf. physalidis (GenBank JX142654.1; Identidades = 380/381 (99 %), sem lacunas). Os hits mais próximos usando a sequência tef1 tiveram maior similaridade com Cercospora sp. 3 LO-2017 (GenBank KX522847.1; Identidades = 280/280 (100 %)), Cercospora cf. alchemillicola (GenBank KR733109.1; Identidades = 279/279 (100 %)) e Cercospora samambaiae (GenBank KT037468.1; Identidades = 487/488 (99 %), sem lacunas). Os hits mais próximos usando a sequência tub2 tiveram maior similaridade com Cercospora kikuchii (GenBank AB240222.1; Identidades = 581/581 (100 %)), Cercospora beticola (GenBank XM_023592737.1; Identidades = 754/784 (96 %), sem lacunas) e Cercospora sp. Q (GenBank JX142482.1; Identidades = 1016/1054 (96 %), 4 lacunas (0 %)).
Cladoriella xanthorrhoeae Crous, Persoonia 39: 417. 2017. Fig. 10.
Micélio consistindo de hifas marrom-claras, lisas, septadas, ramificadas, com 2,5–3 µm de diâmetro. Conidióforos solitários, eretos, flexuosos, marrom-médios, lisos, subcilíndricos, não ramificados, 1–4-septados, 20–40 × 2,5–3 µm; às vezes, conidióforos podem ser reduzidos a células conidiogênicas que surgem das hifas, 5–8 × 2,5–3 µm. Células conidiogênicas terminais, integradas, marrom-médias, lisas a finamente rugosas, subcilíndricas, com 1–2 loci de ponta achatada, 2–2,5 µm de diâmetro, escurecidos, um tanto espessados, 7–12 × 3,5–4 µm. Ramoconídios marrom-médios, finamente verruculosos, 1(–2)-septados, subcilíndricos a algo fusoides-elipsoides, 12–19 × 3,5–4 µm; loci espessados, escurecidos, com 1,5–2 µm de diâmetro. Conídios em cadeias curtas (2–6), ramificadas, marrom-médios, verruculosos, fusoides-elipsoides, 1-septados; hilos truncados, espessados, escurecidos, com 1,5–2 µm de diâmetro, (9–)12–15(–17) × (3,5–)4 µm; hilos espessados, algo escurecidos, com 1,5–2 µm de diâmetro.
Características de cultivo: Colônias erumpentes, espalhando-se, com micélio aéreo esparso e margem plumosa, atingindo 7 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, PDA e OA, superfície cinza-ferro; pigmento vermelho difuso visível no ágar em PDA e OA.
Material examinado: Austrália, Nova Gales do Sul, Nullica State Forest, em folhas de Xanthorrhoea sp. (Asphodelaceae), Nov. 2016, P.W. Crous, HPC 1830, CBS H-23804, cultura CPC 32609 = CBS 144523.
Notas: Cladoriella xanthorrhoeae foi recentemente descrita em Xanthorrhoea sp. da Austrália, e CPC 32609 representa a segunda coleta deste fungo da localidade-tipo, onde parece estar bem estabelecido em Xanthorrhoea.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, a sequência ITS foi idêntica a Cladoriella xanthorrhoeae (GenBank NR_156392.1; Identidades = 602/602 (100 %)); e relacionada a Cladoriella rubrigena (GenBank NR_156219.1; Identidades = 498/552 (90 %), 15 lacunas (2 %)) e Cladoriella eucalypti (GenBank EU040224.1; Identidades = 589/641 (92 %), 15 lacunas (2 %)). Os resultados mais próximos usando a sequência LSU são Cladoriella rubrigena (GenBank NG_058780.1; Identidades = 867/881 (98 %), 2 lacunas (0 %)), Cladoriella eucalypti (GenBank EU040224.1; Identidades = 861/876 (98 %), 2 lacunas (0 %)) e Cladoriella paleospora (GenBank MH874922.1; Identidades = 823/880 (94 %), 3 lacunas (0 %)).
Creosphaeria sassafras (Schwein.) Y.M. Ju et al., Mycotaxon 47: 223. 1993. Fig. 11.
Basônimo: Sphaeria sassafras Schwein., Schr. naturf. Ges. Leipzig 1: 36 (10 of repr.). 1822.
In vitro: Micélio composto por hifas hialinas a marrons, lisas a verrugosas, 1.5–3 µm de diâmetro. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas ocorrendo em hifas mais estreitas (1.5–2 µm de diâmetro), solitários, eretos, marrom-claros a hialinos, lisos, nós 1–3 × 1–1.5 µm. Conídios hialinos, lisos, asseptados, curvos, fusiformes, ápice subobtuso, base truncada, 20–30 × 2 µm.
Características da cultura: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, cobrindo a placa após 2 semanas a 25 °C. Em MEA superfície avelã, reverso sépia na região interna, laranja na zona externa; em PDA superfície avelã, reverso marrom vináceo; em OA superfície avelã.
Material examinado: Espanha, Barcelona, galho morto de Laurus nobilis (Lauraceae), Mar. 2017, M. Vera Intrago & R.K. Schumacher, HPC 2043, RKS 90, cultura CPC 33410 = CBS 144984.
Notas: conídios relatados do morfo assexuado medindo 16–22 × 1.2–1.8 µm. Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, os resultados mais próximos usando a sequência ITS tiveram a maior similaridade com várias sequências de Creosphaeria sassafras (e.g. GenBank HQ660446.1; Identidades = 515/516 (99 %), sem lacunas). Os resultados mais próximos usando a sequência LSU são Creosphaeria sassafras (GenBank MH876173.1; Identidades = 854/854 (100 %), sem lacunas), Lopadostoma lechatii (GenBank KC774590.1; Identidades = 833/854 (98 %), sem lacunas) e Lopadostoma meridionale (GenBank KC774599.1; Identidades = 833/855 (97 %), 3 lacunas (0 %)).
Cylindrocladiella peruviana (Bat. et al.) Boesew., Canad. J. Bot. 60: 2289. 1982. Fig. 12.
Basônimo: Cylindrocladium peruvianum Bat. et al., Atas Inst. Micol. Univ. Recife 2: 386. 1965.
Conidióforos dimórficos, penicilados e subverticilados, mononematosos e hialinos, compreendendo um estipe, um arranjo penicilado de ramos férteis, uma extensão do estipe e uma vesícula terminal; extensão do estipe asseptada, reta, 50–70 × 2–3 μm, de parede espessa com um septo basal, terminando em vesículas de parede fina, elipsoides a lanceoladas, com 3–4 μm de largura. Aparelho conidiogênico penicilado com ramos primários 0–1-septados, 15–25 × 3–4 μm, ramos secundários asseptados, 8–15 × 2.5–3 μm, cada ramo terminal produzindo 2–4 fiálides; fiálides cilíndricas, doliiformes a reniformes a cimbiformes, hialinas, asseptadas, 9–12 × 2.5–3 μm, ápice com espessamento periclinal minúsculo e colarinho. Conidióforos subverticilados compostos por um estipe septado e raramente ramos primários terminando em 2–4 fiálides; fiálides cimbiformes a cilíndricas, hialinas, asseptadas, 20–30 × 2–2.5 μm, ápice com espessamento periclinal minúsculo e colarinho. Conídios cilíndricos, arredondados em ambas as extremidades, retos, (0–)1-septados, (9–)10–12(–13) × 2(–2.5) μm, mantidos em aglomerados assimétricos por limo incolor. Morfo sexual desconhecido.
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo flocoso e moderado, cobrindo a placa após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, BDA e OA, superfície sépia com manchas de ocre, reverso umbro a sépia.
Material examinado: África do Sul, Província do Cabo Ocidental, Stellenbosch, Pelargonium sp. (Geraniaceae), 1 de fev. de 2010, P.W. Crous, CBS H-23821, cultura CPC 33527 = CBS 145053.
Notas: Cylindrocladiella peruviana é conhecida por ocorrer na África do Sul e foi confirmada em hospedeiros como Acacia mearnsii, Eucalyptus spp. e Vitis vinifera, mas este é o primeiro registro em Pelargonium.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, a sequência ITS foi idêntica a Cylindrocladiella peruviana (GenBank KU896173.1; Identidades = 550/550), Cylindrocladiella parvispora (GenBank MH017028.1; Identidades = 546/546) e Cylindrocladiella malesiana (GenBank MH017019.1; Identidades = 546/546). Os resultados mais próximos usando a sequência LSU são Cylindrocladiella peruviana (GenBank JN099266.1; Identidades = 841/841 (100 %), sem lacunas), Cylindrocladiella longiphialidica (GenBank MH876846.1; Identidades = 840/841 (99 %), sem lacunas) e Cylindrocladiella camelliae (GenBank JN099248.1; Identidades = 840/841 (99 %), sem lacunas). Os resultados mais próximos usando a sequência his3 tiveram maior similaridade com Cylindrocladiella peruviana (GenBank MH017011.1; Identidades = 480/480 (100 %), sem lacunas), Cylindrocladiella microcylindrica (como Nectricladiella camelliae, GenBank AY793523.1; Identidades = 442/457 (97 %), 5 lacunas (1 %)) e Cylindrocladiella solicola (GenBank MH017002.1; Identidades = 469/485 (97 %), 5 lacunas (1 %)). Os resultados mais próximos usando a sequência rpb2 tiveram maior similaridade com Cylindrocladiella camelliae (GenBank KM232304.1; Identidades = 819/837 (98 %), sem lacunas), Cylindrocladiella lageniformis (GenBank KM232303.1; Identidades = 648/722 (90 %), sem lacunas) e Calonectria brevistipitata (GenBank KY653367.1; Identidades = 744/861 (86 %), 2 lacunas (0 %)). Os resultados mais próximos usando a sequência tef1 tiveram maior similaridade com Cylindrocladiella peruviana (GenBank JN099007.1; Identidades = 482/483 (99 %), 1 lacuna (0 %)), Cylindrocladiella obpyriformis (GenBank MH016985.1; Identidades = 475/489 (97 %), 7 lacunas (1 %)) e Cylindrocladiella arbusta (GenBank MH016978.1; Identidades = 475/489 (97 %), 7 lacunas (1 %)). Os resultados mais próximos usando a sequência tub2 tiveram maior similaridade com Cylindrocladiella peruviana (GenBank JN098801.1; Identidades = 618/618 (100 %), sem lacunas), Cylindrocladiella terrestris (GenBank MF444930.1; Identidades = 482/493 (98 %), sem lacunas) e Cylindrocladiella camelliae (GenBank JN098749.1; Identidades = 604/618 (98 %), sem lacunas).
Cyphellophora clematidis Crous & R.K. Schumach., sp. nov. MycoBank MB829301. Fig. 13.
Etimologia: O nome reflete o gênero hospedeiro Clematis do qual foi isolado.
Micélio consistindo de hifas marrom-claras, lisas, septadas, ramificadas, com (1,5–)2–3 µm de diâmetro. Conidiomatas esporodociais, redondos, erupentes, oliváceos, 30–120 µm de diâmetro, consistindo de um estroma basal de células globosas a elipsoides, oliváceas, de parede lisa, 2–4 µm de diâmetro, dando origem a células conidiogênicas agregadas. Células conidiogênicas elipsoides a ampuliformes, marrom-oliváceas, lisas, 4–6(–10) × 2,5–4 µm, fialídicas com colarinho mais escuro e alargado, 1,5–2 µm de diâmetro. Conídios asseptados, agregados em massa mucoide, oliváceos, lisos, gutulados, elipsoides, ápice obtuso, afinando em direção a uma base truncada, 0,5 µm de diâmetro, (3–)4–5(–6,5) × (1,5–)2(–2,5) µm.
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo esparso a moderado e margem lisa e lobada, atingindo 40 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 ºC. Em MEA, superfície umbra, reverso castanho; em PDA, superfície avelã, reverso cinza-ferro; em OA, superfície cinza-oliváceo.
Typus: Áustria, Baixa Áustria, Gaaden, em Clematis vitalba (Ranunculaceae), 21 abr. 2017, M. Mann & R.K. Schumacher, HPC 2101 = RKS 102 (holótipo CBS H-23827, cultura ex-tipo CPC 33880 = CBS 144983).
Notas: Embora Cyphellophora clematidis tenha sido isolada de Clematis vitalba, Cyphellophora também contém espécies associadas à pele e unhas de humanos e animais. Cyphellophora clematidis é filogeneticamente distinta de outras espécies atualmente conhecidas com base em suas sequências de DNA, e é aqui introduzida como nova, sendo morfologicamente distinta por apresentar predominantemente conídios asseptados.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos do GenBank do NCBI, os hits mais próximos usando a sequência de ITS tiveram maior similaridade com Anthopsis deltoidea (GenBank NR_153555.1; Identidades = 492/557 (88 %), 40 gaps (7 %)), Cyphellophora pluriseptata (GenBank MH063042.1; Identidades = 481/562 (86 %), 24 gaps (4 %)) e Cyphellophora eucalypti (GenBank GQ303274.1; Identidades = 530/633 (84 %), 48 gaps (7 %)). Os hits mais próximos usando a sequência de LSU são Cyphellophora fusarioides (GenBank MH877022.1; Identidades = 836/861 (97 %), 4 gaps (0 %)), Cyphellophora musae (GenBank KP122932.1; Identidades = 835/861 (97 %), 3 gaps (0 %)) e Cyphellophora suttonii (GenBank MH874978.1; Identidades = 834/861 (97 %), 4 gaps (0 %)). Nenhum hit significativo foi obtido quando a sequência de tub2 foi usada em buscas blastn e megablast.
Diaporthe anacardii (Early & Punith.) R.R. Gomes et al., Persoonia 31: 15. 2013. Fig. 14.
Basônimo: Phomopsis anacardii Early & Punith., Trans. Brit. Mycol. Soc. 59: 345. 1972.
Conidiomas pretos, globosos, erumpentes, 250–350 µm de diâmetro, exsudando uma massa conidial cremosa. Conidióforos hialinos, lisos, ramificados, 2–3-septados, subcilíndricos, 25–50 × 2,5–3,5 µm. Células conidiogênicas subcilíndricas, lisas, terminais, intercalares, 15–35 × 2–2,5 µm, ápice com 1,5 µm de diâmetro, geralmente sem colar. Conídios solitários, asseptados, hialinos, lisos, gutulados, fusoides-elipsoides, retos, ápice subobtuso, base truncada, 1 µm de diâmetro, (7–)8–10(–11) × (2,5–)3 µm.
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado, cobrindo a placa após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, PDA e OA, superfície camurça com manchas de cinza-oliváceo pálido, reverso canela.
Material examinado: África do Sul, Província do Cabo Ocidental, Stellenbosch, em serapilheira não identificada, 2010, P.W. Crous, HPC 1692, cultura CPC 33074 = CBS 144610.
Notas: Esta coleção está intimamente relacionada a Diaporthe anacardii (de Anacardi occidentalis no Quênia, e também registrada na Nigéria, Guiné e Cuba), e Diaporthe velutina (de folhas de Neolitsea sp., Callerya cinerea e Camellia sinensis coletadas na China). Com base nos dados das sequências de cmdA e tef1, este isolado é identificado como Diaporthe anacardii, o que representa o primeiro registro na África do Sul.
Com base em uma busca no banco de dados de nucleotídeos do GenBank do NCBI usando megablast, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Diaporthe velutina (GenBank NR_152470.1; Identidades = 561/563 (99 %), 2 gaps (0 %)), Diaporthe foeniculina (GenBank KP050598.1; Identidades = 534/538 (99 %), 2 gaps (0 %)), e Diaporthe inconspicua (GenBank KC343125.1; Identidades = 556/561 (99 %), sem gaps). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Diaporthe velutina (GenBank NG_059146.1; Identidades = 788/788 (100 %)), Diaporthe phragmitis (GenBank MH878644.1; Identidades = 785/788 (99 %), sem gaps), e Diaporthe cotoneastri (GenBank MH873257.1; Identidades = 785/788 (99 %), sem gaps). As correspondências mais próximas usando a sequência cmdA tiveram maior similaridade com Diaporthe anacardii (GenBank KC343266.1; Identidades = 681/682 (99 %), sem gaps), Diaporthe portugallica (como Diaporthe sp. VG2018, GenBank MH063893.1; Identidades = 469/486 (97 %), sem gaps), e Diaporthe velutina (GenBank KX999286.1; Identidades = 444/461 (96 %), sem gaps). As correspondências mais próximas usando a sequência tef1 tiveram maior similaridade com Diaporthe anacardii (GenBank KC343750.1; Identidades = 335/341 (98 %), 2 gaps (0 %)), Diaporthe portugallica (como Diaporthe sp. VG-2018, GenBank MH063911.1; Identidades = 324/339 (96 %), sem gaps), e Diaporthe velutina (GenBank KX999178.1; Identidades = 324/339 (96 %), 2 gaps (0 %)).
Diaporthe eres Nitschke, Pyrenomyc. Germ. 2: 245. 1870. Fig. 15.
Conidiomas picnídios, globosos, erumpentes, marrons, de até 400 µm de diâmetro; gotículas de conídios cremosas exsudam do ostíolo; paredes com 3–6 camadas de textura angular marrom. Conidióforos revestindo a cavidade interna, hialinos, lisos, 1–3-septados, ramificados, densamente agregados, subcilíndricos, retos a sinuosos, 15–35 × 3–4 µm. Células conidiogênicas 6–20 × 2–2,5 µm, fiálicas, subcilíndricas, terminais e intercalares, com ligeiro afinamento apical em direção ao ápice, 0,5 µm de diâmetro com espessamento periclinal visível; colarinho inconspícuo. Conídios asseptados, hialinos, lisos, fusoides, afinando em ambas as extremidades, retos, ápice subobtuso, base truncada, (7–)8–9(–10) × (2–)2,5(–3) µm.
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo esparso a moderado e margem lisa, lobada, cobrindo a placa após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, PDA e OA, superfície isabelina com manchas de sépia e mel, reverso vináceo-marrom com manchas de avelã e ocre.
Material examinado: Holanda, em Lactuca sativa (Asteraceae), jun. 2017, W. Quaedvlieg, NAK Tuinbouw INS-17-08263A, cultura CPC 34055 = CBS 145040.
Notas: Diaporthe inclui importantes patógenos de plantas, sapróbios e endófitos em uma ampla gama de hospedeiros vegetais. Diaporthe eres, a espécie-tipo de Diaporthe, foi circunscrita por. A presente coleção de Lactuca sativa nos Países Baixos se enquadra no conceito amplo de D. eres.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos do GenBank do NCBI, a sequência ITS foi idêntica a Diaporthe eres (GenBank MG281122.1; Identidades = 576/576 (100 %)) e Diaporthe cotoneastri (GenBank KC145903.1; Identidades = 576/576 (100 %)). Os hits mais próximos usando a sequência LSU são Diaporthe eres (GenBank MH867392.1; Identidades = 893/893 (100 %), sem gaps), Diaporthe cotoneastri (GenBank MH873257.1; Identidades = 891/891 (100 %), sem gaps) e Diaporthe ambigua (GenBank MH867598.1; Identidades = 892/893 (99 %), sem gaps). Os hits mais próximos usando a sequência actA tiveram maior similaridade com Diaporthe eres (GenBank KJ420750.1; Identidades = 234/234 (100 %)), Diaporthe cotoneastri (GenBank KC843231.1; Identidades = 273/275 (99 %), sem gaps) e Phomopsis fukushii (GenBank JN230379.1; Identidades = 265/268 (99 %), sem gaps). Os hits mais próximos usando a sequência cmdA tiveram maior similaridade com Diaporthe cf. nobilis (GenBank KC343391.1; Identidades = 409/409 (100 %), sem gaps), Diaporthe eres (GenBank KC343331.1; Identidades = 409/409 (100 %), sem gaps) e Diaporthe cotoneastri (GenBank KC763137.1; Identidades = 403/409 (99 %), 4 gaps (0 %)). Os hits mais próximos usando a sequência rpb2 tiveram maior similaridade com Diaporthe ampelina (como Phomopsis viticola, GenBank HQ446836.1; Identidades = 632/683 (93 %), sem gaps), Diaporthe limonicola (GenBank MH797629.1; Identidades = 622/683 (91 %), sem gaps) e Diaporthe foeniculina (GenBank MG922553.1; Identidades = 619/680 (91 %), sem gaps). Os hits mais próximos usando a sequência tef1 tiveram maior similaridade com Diaporthe eres (GenBank MG281568.1; Identidades = 610/610 (100 %), sem gaps), Diaporthe cf. nobilis (GenBank KC343875.1; Identidades = 346/347 (99 %), sem gaps) e Diaporthe phaseolorum (GenBank HQ445915.1; Identidades = 355/359 (99 %), sem gaps). Os hits mais próximos usando a sequência tub2 tiveram maior similaridade com Diaporthe hungariae (GenBank MG281303.1; Identidades = 317/317 (100 %), sem gaps), Diaporthe rosicola (GenBank MG843877.1; Identidades = 311/313 (99 %), sem gaps) e Diaporthe betulae (GenBank KT733021.1; Identidades = 429/439 (98 %), sem gaps).
Dichotomophthora basellae Hern.-Restr. et al., Stud. Mycol. 92: 69. 2018. Fig. 16.
Hifas hialinas a marrons, septadas, lisas a verruculosas, 6–8 µm de largura. Conidióforos macronematosos, não ramificados ou irregularmente ramificados, lobados no ápice, formando um estipe e uma cabeça; estipe marrom-claro, liso, 500–2000 × 9–17 µm; cabeça 30–60 µm de diâmetro, marrom-claro. Células conidiogênicas politréticas, integradas e terminais, lobadas, cicatrizadas, lóbulos individuais 15–25 × 9–20 µm. Conídios (50–)80–95(–105) × (9–)12–14(–15), solitários, secos, subcilíndricos, arredondados nas extremidades, amarelo-acastanhados pálidos, 3–5-distosseptados, às vezes bifurcados no ápice, resultando em uma aparência bifurcada, dois ramos apicais 0–2-septados, 7–30 µm de comprimento. Microconídios obovoides a elipsoides, 0–2-distosseptados, 10–30 × 10–11 µm. Esclerócios e morfologia sexual desconhecidos.
Características de cultura: Colônias espalhadas, com micélio aéreo esparso a moderado e margem lisa e uniforme, atingindo 50 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, superfície e reverso umbra, com pigmento damasco difuso; em PDA, superfície e reverso laranja, com manchas de umbra e pigmento laranja; em OA, superfície laranja, com manchas de umbra, pigmento damasco a laranja.
Material examinado: Tailândia, Província de Chiang Mai, Chiang Mai, em planta hospedeira não identificada, 2008, R. Cheewangkoon, CBS H-23813, cultura CPC 33044 = CBS 145050.
Notas: O gênero Dichotomophthora foi recentemente revisado por, que aceitou quatro espécies associadas a manchas foliares em várias plantas hospedeiras. Dichotomophthora basellae foi descrita como tendo conídios de 32–86 × 10–18 μm, elipsoides a cilíndricos, arredondados nas extremidades, e 2–5-distosseptados. O presente isolado é morfologicamente atípico, pois seus conídios frequentemente se bifurcam no ápice. Filogeneticamente, no entanto, é idêntico a D. basellae e foi coletado na mesma localidade.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos do GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência de ITS tiveram maior similaridade com Dichotomophthora basellae (GenBank NR_158422.1; Identidades = 595/595 (100 %), sem gaps) e Dichotomophthora lutea (GenBank NR_158420.1; Identidades = 590/596 (99 %), 1 gap (0 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência de LSU de CPC 33044 são Dichotomophthora portulacae (GenBank LT990624.1; Identidades = 833/833 (100 %), sem gaps), Dichotomophthora lutea (GenBank LT990622.1; Identidades = 810/810 (100 %), sem gaps), Curvularia papendorfii (GenBank MH875471.1; Identidades = 855/855 (100 %), sem gaps), Bipolaris cactivora (GenBank LT715590.1; Identidades = 855/855 (100 %), sem gaps) e Drechslera helianthi (GenBank MH876194.1; Identidades = 854/855 (99 %), sem gaps). Não há sequências de LSU de Dichotomophthora basellae disponíveis no GenBank. As correspondências mais próximas usando a sequência de rpb2 tiveram maior similaridade com Dichotomophthora basellae (GenBank LT990640.1; Identidades = 860/860 (100 %), sem gaps), Dichotomophthora lutea (GenBank LT990636.1; Identidades = 906/911 (99 %), sem gaps) e Bipolaris cactivora (GenBank LT715726.1; Identidades = 718/739 (97 %), sem gaps).
Exophiala abietophila Crous & R.K. Schumach., sp. nov. MycoBank MB829302. Fig. 17.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero hospedeiro Abies do qual foi isolado.
Micélio composto por hifas lisas, septadas, marrons, ramificadas, com 2–3 µm de diâmetro. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas ou com uma célula de suporte. Células conidiogênicas marrom-claras, lisas, reduzidas a lóculos conidiogênicos, com 0,5 µm de diâmetro, ou ampuliformes a doliiformes, 4–6 × 2,5–3 µm. Conídios asseptados, (2,5–)3(–3,5) × 1,5–2 µm, elipsoides, hialinos, de parede lisa, gutulados, ápice obtuso, afinando para uma base truncada, com 0,5 µm de diâmetro.
Características de cultivo: Colônias planas, espalhadas, com superfície dobrada, micélio aéreo esparso e margem lisa, lobada, atingindo 10 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, PDA e OA, superfície e reverso umbra.
Tipo: Noruega, Oppland, Vestre Sildre, em casca de Abies alba (Pinaceae), 29 de julho de 2017, F. Sanchez et al., HPC 2230 (holótipo CBS H-23836, cultura ex-tipo CPC 34580 = CBS 145038).
Notas: Exophiala inclui várias espécies de hifomicetos dematiáceos que são clinicamente relevantes. Espécies de Exophiala são, no entanto, comumente isoladas de serapilheira e solo. Filogeneticamente, E. abietophila é distinta de todas as espécies atualmente conhecidas por seus dados de sequência de DNA.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos do GenBank do NCBI, os hits mais próximos usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Exophiala moniliae (GenBank HE605213.1; Identidades = 567/643 (88 %), 34 gaps (5 %)), Exophiala bergeri (GenBank MH857080.1; Identidades = 484/544 (89 %), 25 gaps (4 %)), e Atrokylindriopsis setulosa (GenBank KP337330.1; Identidades = 516/576 (90 %), 19 gaps (3 %)). Os hits mais próximos usando a sequência LSU são Exophiala dermatitidis (GenBank DQ823100.1; Identidades = 1112/1194 (93 %), 24 gaps (2 %)), Exophiala bergeri (GenBank NG_059199.1; Identidades = 1099/1184 (93 %), 27 gaps (2 %)), e Capronia pilosella (GenBank DQ823099.1; Identidades = 1106/1199 (92 %), 27 gaps (2 %)).
Exophiala lignicola Crous & Akulov, sp. nov. MycoBank MB829303. Fig. 18.
Etimologia: O nome refere-se à madeira podre da qual foi isolado.
Micélio composto por hifas lisas, marrom-claras, septadas, ramificadas, com 2–3 µm de diâmetro. Conidióforos penicilados com conídios em massa apical viscosa, ou reduzidos a células conidiogênicas solitárias ou lóculos em hifas; conidióforos eretos, surgindo de hifas superficiais, marrom-claros a médios, lisos, subcilíndricos, flexuosos, ramificados ou não, estipe 10–20 × 2–3 µm, com conidióforos penicilados apicais e laterais; ramos primários asseptados, marrom-médios, lisos, 5–15 × 2–2,5 µm; ramos secundários e terciários subcilíndricos, marrom-médios, lisos, asseptados, 8–12 × 1,5–2 µm, dando origem a 1–4 fiálides, marrom-claras, lisas, subcilíndricas a fusoide-elipsoides, com afinamento proeminente no ápice para formar um canal cilíndrico estreito com proliferações percurrentes, (1–)8–16 × (1,5–)2 µm. Conídios solitários, asseptados, marrom-claros, lisos, fusoide-elipsoides, ápice obtuso, base truncada, levemente refletivos, (3,5–)4(–5,5) × 2(–3) µm.
Características de cultura: Colônias erumpentes, espalhadas, com micélio aéreo esparso e margem lisa, lobada, atingindo 12 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, BDA e OA, superfície e reverso cinza oliváceo.
Tipo: Ucrânia, Kharkiv, Parque Florestal, em tronco descorticado caído de cf. Quercus sp. (Fagaceae) em uma floresta nativa de carvalho-bordo-freixo, 28 out. 2016, A. Akulov, CWU (MYC) AS 6112 = HPC 1509 (holótipo CBS H-23802, cultura ex-tipo CPC 32464 = CBS 144622).
Notas: Exophiala (Herpotrichiellaceae) é comumente isolada de madeira em decomposição, solo e serapilheira. Este gênero de hifomicetos dematiáceos, comumente referido como leveduras negras, é morfologicamente variável, com conidióforos variando de estruturas peniciladas bem definidas como em E. lignicola, ou lócus solitários em hifas. O gênero atualmente contém aproximadamente 60 epítetos, vários dos quais possuem morfos sexuais de Capronia. Numerosas espécies de Exophiala / Capronia são conhecidas como fungos fungícolas ou liquenícolas hospedeiro-específicos. Filogeneticamente, E. lignicola é distinta das espécies conhecidas por suas sequências de DNA e, com base em seus conidióforos únicos, é tratada como um táxon único.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos do GenBank do NCBI, os hits mais próximos usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Rhinocladiella coryli (GenBank NR_155727.1; Identidades = 542/612 (89 %), 18 gaps (2 %)), Exophiala eucalypticola (GenBank NR_158438.1; Identidades = 518/589 (88 %), 21 gaps (3 %)) e Rhinocladiella aquaspersa (GenBank MH374866.1; Identidades = 539/619 (87 %), 32 gaps (5 %)). Os hits mais próximos usando a sequência LSU são Exophiala angulospora (GenBank MH874033.1; Identidades = 875/885 (99 %), sem gaps), Capronia coronata (GenBank AF050242.1; Identidades = 875/885 (99 %), sem gaps) e Fonsecaea pedrosoi (GenBank AF050276.1; Identidades = 872/887 (98 %), 2 gaps (0 %)). Nenhum hit significativo foi obtido quando a sequência cmdA foi usada em buscas blastn e megablast. Os hits mais próximos usando a sequência tef1 tiveram maior similaridade com Exophiala dermatitidis (GenBank DQ840566.1; Identidades = 186/192 (97 %), sem gaps), Capronia munkii (GenBank EF413607.1; Identidades = 184/193 (95 %), sem gaps) e Capronia coronata (GenBank XM_007726769.1; Identidades = 187/198 (94 %), 2 gaps (1 %)).
Fuscostagonospora banksiae Crous & Carnegie, sp. nov. MycoBank MB829304. Fig. 19.
Etimologia: O nome reflete o gênero hospedeiro Banksia do qual foi isolado.
Conidiomatas solitários, picnidiais, globosos, marrons, 180–200 µm de diâmetro, exsudando uma massa conidial branco-leitosa. Conidióforos revestindo a cavidade interna, reduzidos a células conidiogênicas ou com uma célula de suporte, ramificados na base ou não, 5–12 × 3–4 µm. Células conidiogênicas ampuliformes a doliiformes, hialinas, lisas, 5–7 × 3–4 µm; proliferando indistintamente de forma percurrente no ápice. Conídios solitários, asseptados, hialinos, lisos, gutulados, elipsoides, ápice obtuso, base arredondada romba, (3–)4(–5) × (2–)2,5(–3) µm.
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lobada e plumosa, atingindo 40 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em superfície de MEA ocre a branco sujo com setores castanhos, reverso ocre com castanho; em superfície de PDA umbra com seções de branco sujo e escarlate, reverso castanho com setores de escarlate e umbra; em superfície de OA umbra a lúteo pálido.
Typus: Austrália, Nova Gales do Sul, Floresta Estadual Riamukka, 31.376993S 151.693569E, em Banksia sp. (Proteaceae), 2015, A.J. Carnegie, HPC 1445 (holótipo CBS H-23796, cultura ex-type CPC 31724 = CBS 144621).
Notas: Fuscostagonospora foi introduzida para uma espécie sexual que ocorre em bambu. A presente coleta representa um morfo assexuado, sendo portanto difícil de comparar com as espécies sexuais conhecidas do gênero, mas é colocada em Fuscostagonospora com base em sua filogenia.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos do GenBank do NCBI, os resultados mais próximos usando a sequência de ITS apresentaram maior similaridade com Periconia pseudobyssoides (GenBank KY364628.1; Identidades = 426/464 (92 %), 10 lacunas (2 %)), Periconia byssoides (GenBank KY364620.1; Identidades = 426/464 (92 %), 10 lacunas (2 %)), e Fuscostagonospora sasae (GenBank NR_153964.1; Identidades = 425/468 (91 %), 16 lacunas (3 %)). Os resultados mais próximos usando a sequência de LSU são Fuscostagonospora cytisi (GenBank KY770978.1; Identidades = 839/846 (99 %), sem lacunas), Fuscostagonospora sasae (GenBank AB807548.1; Identidades = 838/850 (99 %), sem lacunas), e Corynespora olivacea (GenBank JQ044448.1; Identidades = 858/879 (98 %), 5 lacunas (0 %)).
Gaeumannomycella caricicola Hern.-Restr., Crous & R.K. Schumach., sp. nov. MycoBank MB829305. Fig. 20.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero hospedeiro Carex do qual foi isolado.
In vivo. Ascomata periteciais, imersos ou semi-imersos no substrato, globosos, subglobosos a elípticos, marrom pálido, 275–390 × 135–235 µm, com um pescoço cilíndrico lateral, central, 108–167 × 57–97 µm; parede do ascoma textura intrincata a epidermoidea. Paráfises esparsas, basalmente moniliformes, ascendentemente filiformes, não ramificadas, multicelulares, hialinas, de parede fina e lisas, evanescentes. Ascos numerosos, unitunicados, cilíndricos a alongados clavados, pedicelados, 8-esporados, 73–210 × 9–18 µm. Ascósporos cilíndricos, a levemente curvos em uma ou ambas as extremidades, mais largos no meio, afunilando em direção à base, extremidades arredondadas, multigutulados, 0–3-septados, septos frequentemente indistintos, hialinos, 32–45 × 3–3,5 µm. Hifopódios marrons, lobados (poucos hifopódios foram observados próximos ao pescoço do peritécio).
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, com superfície dobrada, micélio aéreo esparso a moderado e margem lisa e lobada, cobrindo a placa após 2 semanas a 25 °C. Em superfície de MEA oliváceo pálido, reverso lúteo; em superfície e reverso de PDA cinza oliváceo; em superfície de OA cinza oliváceo.
Tipo: Alemanha, perto de Berlim, em folha morta de Carex remota (Cyperaceae), 2 de Junho de 2017, R.K. Schumacher, HPC 2136 = RKS 122 (holótipo CBS H-23793, cultura ex-tipo CPC 33925 = CBS 145041).
Notas: Gaeumannomycella foi introduzida por para um gênero de fungos morfologicamente semelhantes a Gaeumannomyces, e associado a uma doença em Cyperaceae. Gaeumannomycella caricicola é filogeneticamente distinta de Gaeumannomycella caricis, a única outra espécie atualmente conhecida no gênero. É interessante o fato de que ambas as espécies ocorrem em Carex.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos do GenBank do NCBI, os resultados mais próximos usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Slopeiomyces cylindrosporus (como Gaeumannomyces cylindrosporus, GenBank JF508361.1; Identidades = 506/519 (97%), 3 lacunas (0%)), Gaeumannomycella caricis (GenBank KX306478.1; Identidades = 523/553 (95%), 10 lacunas (1%)) e Nakataea oryzae (GenBank FJ746639.1; Identidades = 511/550 (93%), 9 lacunas (1%)). Os resultados mais próximos usando a sequência LSU são Slopeiomyces cylindrosporus (GenBank KM009159.1; Identidades = 835/848 (98%), sem lacunas), Omnidemptus affinis (GenBank NG_059478.1; Identidades = 832/848 (98%), sem lacunas) e Gaeumannomyces graminicola (GenBank DQ341496.1; Identidades = 832/848 (98%), sem lacunas). Resultados distantes usando a sequência his3 tiveram maior similaridade com Colletotrichum arxii (GenBank KF687846.1; Identidades = 173/183 (95%), sem lacunas), Verticillium albo-atrum (GenBank DQ266200.1; Identidades = 173/184 (94%), sem lacunas) e Colletotrichum vietnamense (GenBank KF687854.1; Identidades = 172/183 (94%), sem lacunas). Resultados distantes usando a sequência tub2 tiveram maior similaridade com Gibellina cerealis (GenBank KT377187.1; Identidades = 334/409 (82%), 28 lacunas (6%)), Slopeiomyces cylindrosporus (Gaeumannomyces cylindrosporus as, GenBank AY435448.1; Identidades = 333/425 (78%), 32 lacunas (7%)) e Magnaporthiopsis maydis (como Cephalosporium maydis, GenBank AY435435.1; Identidades = 265/351 (75%), 27 lacunas (7%)).
Hansfordiaceae Crous, fam. nov. MycoBank MB829455.
Micélio superficial a imerso. Conidióforos solitários, eretos, retos a flexuosos, ramificados, marrom médio, lisos, surgindo do micélio superficial, às vezes setiformes, multisseptados com ramos laterais, cada um dando origem a vários ramos menores, marrom pálido, que formam células conidiogênicas, sub-hialinas, subcilíndricas ou clavadas; lóculos apicais subdenticulados com conidiogênese rexolítica. Conídios asseptados, solitários, secos, globosos a elipsoides a fusoides, hialinos a marrom pálido, lisos ou finamente rugosos, com pequena franja basal derivada do ápice da célula separadora.
Gênero tipo: Hansfordia S. Hughes.
Espécie tipo: H. ovalispora S. Hughes.
Hansfordia pruni Crous, sp. nov. MycoBank MB829306. Figs 21, 22.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero Prunus do qual foi isolado.
Conidióforos solitários, eretos, retos a flexuosos, ramificados, marrom médio, lisos, surgindo do micélio superficial, 100–1000 × 2,5–3 μm, multisseptados com ramos laterais na metade superior, cada um dando origem a vários ramos menores, marrom-claros, que formam 1–2 células conidiogênicas, sub-hialinas, subcilíndricas com ápice afilado, 5–20 × 2,5–3 µm, com 2–6 lóculos apicais subdenticulados com conidiogênese rexolítica. Conídios asseptados, solitários, secos, globosos a subglobosos, sub-hialinos, finamente rugosos, (4–)5(–6) × 4 µm de diâmetro, com franja basal diminuta derivada do ápice da célula separadora.
Características de cultura: Colônias erumpentes, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margens lobadas e plumosas, atingindo 35 mm de diâmetro após 2 semanas. Em MEA, fulvo, reverso canela; em PDA, isabelino, reverso marrom vináceo; em OA, vináceo-claro.
Tipo: Itália, em ramo de Prunus persica (Rosaceae), depositado em 1956, M. Ribaldi (holótipo CBS H-23837, cultura ex-tipo IMI 146912 = CBS 194.56).
Notas: Hansfordia pulvinata possui muitos sinônimos propostos que, com base na morfologia, parecem semelhantes ao tipo. No entanto, H. pruni difere por ter conidióforos mais longos, lóculos subdenticulados mais agregados em suas células conidiogênicas e conídios menores.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, a sequência de ITS foi idêntica a Hansfordia pulvinata (GenBank KU683763.1; Identidades = 1040/1040 (100%)); outros hits mais próximos incluíram Entosordaria quercina (GenBank MF488994.1; Identidades = 842/915 (92%), 20 gaps (2%)) e Entosordaria perfidiosa (GenBank MF488993.1; Identidades = 840/914 (92%), 18 gaps (1%)).
Hansfordia pulvinata (Berk. & M.A. Curtis) S. Hughes, Canad. J. Bot. 36: 771. 1958. Fig. 21, 23.
Basônimo: Polyactis pulvinata Berk. & M.A. Curtis, Grevillea 3(27): 110. 1875.
Conidióforos solitários, eretos, flexuosos, ramificados, marrom médio, lisos, surgindo do micélio superficial, 200–600 × 3–4 µm, multisseptados com ramos laterais na metade superior, cada um dando origem a vários ramos menores, marrom-claros, que formam 1–2 células conidiogênicas, sub-hialinas, subcilíndricas com ápice afilado, 10–17 × 3–3,5 µm, com 1–2 lóculos apicais subdenticulados com conidiogênese rexolítica. Conídios solitários, secos, globosos, sub-hialinos, finamente rugosos, (5–)6(–7) µm de diâmetro, com franja basal diminuta derivada do ápice da célula separadora.
Características de cultura: Colônias erumpentes, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lobada e plumosa, atingindo 25 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, superfície cinza-olivácea no centro, cinza-fumaça na região externa, reverso lúteo; em PDA, superfície cinza-olivácea no centro, cinza-fumaça na região externa, reverso cinza-oliváceo no centro, lúteo na região externa; em OA, superfície cinza-olivácea pálida, região externa lútea pálida.
Material examinado: Austrália, Nova Gales do Sul, Jardim Botânico Australiano Mount Annan, em folhas de Macrozamia miquelii (Zamiaceae), 25 nov. 2016, P.W. Crous, HPC 1734, CBS H-23581, cultura CPC 32119 = CBS 144422.
Notas: Hansfordia pulvinata (um micoparasita em outros fungos, incluindo Fulvia fulva em tomates) foi originalmente descrita a partir de ramos de Alnus sp. coletados na América do Norte. Precisa ser recoletada nos EUA para fixar a aplicação do nome. Morfologicamente, no entanto, a cultura considerada neste estudo se aplica melhor ao conceito atual para este táxon. Hansfordia pulvinata tem sido sugerida como possível agente de controle biológico para fungos fitopatogênicos.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência de ITS tiveram maior similaridade com Hansfordia pulvinata (GenBank LC177970.1; Identidades = 468/471 (99 %), sem lacunas), Hansfordia pulvinata (GenBank MH863749.1; Identidades = 510/546 (93 %), 11 lacunas (2 %)), Gyrothrix verticiclada (GenBank KC775750.1; Identidades = 407/463 (88 %), 17 lacunas (3 %)), Selenodriella fertilis (GenBank KP859055.1; Identidades = 473/544 (87 %), 24 lacunas (4 %)) e Daldinia bambusicola (GenBank KY610385.1; Identidades = 474/553 (86 %), 22 lacunas (3 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência de LSU são Gyrothrix circinata (GenBank KJ476964.1; Identidades = 793/830 (96 %), 5 lacunas (0 %)), Circinotrichum maculiforme (GenBank KR611896.1; Identidades = 805/844 (95 %), 5 lacunas (0 %)) e Oxydothis garethjonesii (GenBank KY206762.1; Identidades = 799/842 (95 %), 2 lacunas (0 %)).
Hypsotheca Ellis & Everh., J. Mycol. 1: 128. 1885.
Sinônimos: Capnodiella (Sacc.) Sacc. & D. Sacc., Syll. fung. (Abellini) 17: 621. 1905. [baseado em Capnodium maximum]
Sorica Giesenh., Ber. dt. bot. Ges. 22: 195. 1904. [baseado em Sorica dusenii]
Ascomatas separados ou frouxamente agrupados, não surgindo de um estroma visível, marrom-escuros a pretos, ventricosos, retos ou curvos, alongados com um lóculo ascígero intumescido submediano a suprabasal. Parede do ascoma de textura porrecta a textura intricata. Ascos 8-esporados, alongando-se na maturidade e estendendo-se pelo pescoço do ascoma até o ápice antes de deliquescer para liberar ascósporos no ou abaixo do ostíolo; ascósporos liberados acumulando-se em uma massa seca marrom-avermelhada no ostíolo. Ascósporos marrom-dourados, de parede espessa, lisos, globosos deprimidos a subelipsoides. Morfos picnidial e hifomiceto produzidos. Conidiomatas picnidiais solitários, marrom-escuros a pretos, globosos ou globosos deprimidos, ou curto-estipitados, com um ostíolo papilado proeminente, parede de textura angulata a textura intricata. Conidióforos hialinos, surgindo das células internas da parede picnidial, simples ampuliformes ou alongados, septados. Células conidiogênicas fialídicas com um colarinho inconspícuo. Conídios hialinos, assimétricos, oblongos a alantoides ou fusoides, asseptados, lisos. Morfo hifomiceto com cabeças mucoides de conídios dispersos em fiálodes laterais curtas, semelhante a phaeoacremonium, sub-hialinos a marrom-claros, lisos ou rugosos. Células conidiogênicas lageniformes, os colarinhos geralmente inconspícuos ou alargados (semelhantes a phialophora). Conídios asseptados, elipsoides-ovoides, lisos.
Espécie-tipo: Hypsotheca subcorticalis [Basônimo: Sphaeronaema subcorticale, peritécios ocorrendo no interior da casca de Quercus, Nova Jersey, EUA, tipo em K].
Hypsotheca nigra (Schrad. ex DC.) Crous, comb. nov. MycoBank MB829445.
Basônimo: Stilbum nigrum Schrad. ex DC., Flore française 2: 593. 1805.
Sinônimos: Lagenula nigra (Schrad. ex DC.) G. Arnaud, Annls Épiphyt. 16: 267. 1930.
Caliciopsis nigra (Schrad. ex DC) Fitzp., Mycologia 34: 501. 1942.
Hypsotheca maxima (Berk. & M.A. Curtis) Crous, comb. nov. MycoBank MB829446.
Basônimo: Capnodium maximum Berk. & M.A. Curtis, J. Linn. Soc., Bot. 10: 391. 1868 (1869).
Polychaeton maximum (Berk. & M.A. Curtis) Kuntze, Revis. gen. pl. (Leipzig) 1: 13. 1891.
Sorica maxima (Berk. & M.A. Curtis) Giesenh., Ber. dt. bot. Ges. 22: 358. 1904.
Capnodiella maxima (Berk. & M.A. Curtis) Sacc. & D. Sacc., Syll. fung. (Abellini) 17: 621. 1905.
Caliciopsis maxima (Berk. & M.A. Curtis) Höhn., Sitzungsber. Akad. Wiss. Wien, Math.-Naturwiss. Kl., Abt. 1, 128: 84. 1919.
Tipo: Cuba, em frondes de Niphidium sp. (Polypodiaceae) (originalmente identificado como Polypodium sp.), 1941, Wright (holótipo CUP-029913). Brasil, Rio de Janeiro, Nova Friburgo, em frondes de Niphidium crassifolium (Polypodiaceae), 5 nov. 2011, R.W. Barreto (epítipo VIC 42568, cultura ex-epítipo COAD 1983 = CPC 24674).
Material examinado: Brasil, Rio de Janeiro, Nova Friburgo, em frondes de Microgramma squamulosa (Polypodiaceae), 10 out. 2013, R.W. Barreto, VIC 42602.
Hypsotheca pleomorpha (Patricia McGee & I. Pascoe) Crous, comb. nov. MycoBank MB829312. Fig. 24.
Basiónimo: Caliciopsis pleomorpha Patricia McGee & I. Pascoe, Fungal Syst. Evol. 2: 50. 2018.
Conidiomas picnidiais, globosos, ostiolados, marrons, 50–200 µm de diâmetro, separados (em PNA), ou agregados em um estroma marrom (em PDA, MEA). Conidióforos surgindo da camada interna, hialinos, lisos, subcilíndricos, ramificados, 1–4 septados, 5–20 × 3–4 µm. Células conidiogênicas subcilíndricas a doliiformes, hialinas, lisas, terminais e intercalares, fialídicas com espessamento periclinal proeminente, 3–6 × 2–4 µm. Conídios solitários, asseptados, hialinos, lisos, granulares, fusoides-elipsoides, geralmente um tanto curvos, ápice obtuso, afinando em direção à base, truncados, 0,5 µm de diâmetro, (3–) 4–5(–6) × 1,5(–2) µm.
Características de cultura: Colônias espalhadas, superfície dobrada, com micélio aéreo esparso a moderado e margens lisas, lobadas, atingindo 50 mm de diâmetro após 2 semanas. Em MEA, PDA e OA, superfície e reverso castanho.
Material examinado: Austrália, Nova Gales do Sul, em folhas de Eucalyptus piperita (Myrtaceae), 2014, P.W. Crous, HPC 1762, cultivo CBS 144636 = CPC 32144.
Notas: O gênero Caliciopsis (baseado em C. pinea) representa dois clados filogeneticamente distintos e bem suportados, um dos quais é aqui atribuído ao antigo sinônimo genérico Hypsotheca, que parece ser o nome mais antigo disponível para este clado. Hypsotheca (baseado em Hypsotheca subcorticalis; ascósporos globosos) era anteriormente distinguido de Caliciopsis (Caliciopsis pinea; ascósporos elipsoides) com base na forma dos ascósporos, embora Fitzpatrick (1942) não considerasse esse caráter significativo em nível genérico. Morfologicamente, há poucas diferenças entre esses gêneros, exceto que as espécies de Hypsotheca conhecidas em cultura também formam um morfo sinassexual semelhante a Phaeoacremonium em cultura, o que ainda não foi observado para espécies de Caliciopsis s.str. Hypsotheca pleomorpha foi recentemente descrita como o agente causal de uma doença de cancro em Eucalyptus spp. na Austrália, e é aqui relatada em folhas de Eucalyptus piperita, embora seu possível papel como patógeno foliar permaneça desconhecido.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, a sequência ITS foi idêntica a Caliciopsis pleomorpha (GenBank MG641785.1; Identidades = 523/523 (100 %)), e relacionada a Corynelia uberata (GenBank KU204606.1; Identidades = 511/526 (97 %), 5 gaps (0 %)) e Caliciopsis maxima (GenBank KX891229.1; Identidades = 467/533 (88 %), 20 gaps (3 %)). Os hits mais próximos usando a sequência LSU são Caliciopsis nigra (GenBank KP144011.1; Identidades = 769/826 (93 %), 9 gaps (1 %)), Caliciopsis pinea (GenBank DQ678097.1; Identidades = 781/843 (93 %), 8 gaps (0 %)) e Caliciopsis beckhausii (GenBank NG_060418.1; Identidades = 789/855 (92 %), 5 gaps (0 %)).
Jeremyomyces Crous & R.K. Schumach., gen. nov. MycoBank MB829307.
Etymology: Nome refere-se a Jeremy, um jovem que, devido a circunstâncias sociais, tem que viver em um lar de crianças na Alemanha. Apesar dessas circunstâncias difíceis, ele se mostrou um observador atento com especial interesse em fungos.
Ascomas pseudotécios, intracorticais, solitários, gregários, uniloculares, esféricos, pretos; ostíolo indistinto. Perídio com poucas camadas, consistindo em textura angular com células de parede espessa, lisas e egutuladas, camadas internas hialinas, camadas externas marrom-avermelhadas. Parafisoides numerosos, distintamente mais longos que os ascos, basalmente moniliformes, estreitando-se em direção ao ápice e filiformes, células terminais retorcidas, multicelulares, hialinas, de parede fina, lisas, egutuladas, ramificadas, com anastomoses. Ascos 8-esporados, clavados, apicalmente arredondados com câmara ocular, pedicelo curto e furoado, de parede espessa, bitunicados, fissitunicados, câmara apical bem definida, clavados a subcilíndricos, esporos obliquamente bisseriados sobrepostos. Ascósporos hialinos, lisos, gutulados, 1-septados (3-septados com a idade), fusoides, mais largos acima do septo, proeminentemente constritos com bainha mucoide bem definida; célula basal um pouco mais longa e célula apical. Conidiomas desenvolvendo-se em cultura, picnidiais, marrons, globosos com ostíolo central. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas, revestindo a cavidade interna, ampuliformes a doliiformes, hialinas, lisas, fialídicas. Conídios solitários, asseptados, hialinos, lisos, subcilíndricos com extremidades obtusas.
Espécie-tipo: Jeremyomyces labinae Crous & R.K. Schumach.
Jeremyomyces labinae Crous & R.K. Schumach., sp. nov. MycoBank MB829309. Fig. 25.
Etimologia: O nome refere-se à Sra. Elena Labina, uma colega russa que dedicou grande parte de seu tempo pessoal para colaborar com as autoridades desta espécie na pesquisa fúngica.
Ascomata pseudotécio, intracorticolosa, solitária, gregária, unilocular, esférica, preta, mole, +/-fina, ostíolo indistinto, basalmente com algumas hifas curtas e vermelho-acastanhadas, até 200 µm de diâmetro. Perídio com poucas camadas, consistindo em textura angular com células de parede espessa, lisas e egutuladas, camadas internas hialinas, camadas externas vermelho-acastanhadas. Parafisóides numerosos, distintamente mais longos que os ascos, basalmente moniliformes, afilando-se em direção ao ápice e filiformes, células terminais retorcidas, pluricelulares, 2–3 µm de diâmetro, hialinas, de parede fina, lisas, egutuladas, ramificadas, com anastomoses. Ascos 8-esporados, clavados, apicalmente arredondados com câmara ocular, pedicelo curto e fúrceo, de parede espessa, bitunicados, fissitunicados, 75–115 × 10–13 µm, câmara apical bem definida, 2 µm de diâmetro, clavados a subcilíndricos, esporos obliquamente bisseriados sobrepostos. Ascósporos hialinos, lisos, gutulados (pelo menos 2 gútulas por célula), 1-septados (3-septados com a idade), fusoides, mais largos acima do septo, prominentemente constritos com bainha mucoide bem definida, 5 µm de diâmetro; célula basal um pouco mais longa e célula apical, (19–)22–24(–26) × (4–)5(–6) µm. Em cultura: Conidiomas desenvolvendo-se em cultura, picnidiais, castanhos, globosos com ostíolo central, 150–180 µm de diâmetro. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas, revestindo a cavidade interna, ampuliformes a doliiformes, hialinos, lisos, fialídicos, 3–4 × 3–5 µm. Conídios solitários, asseptados, hialinos, lisos, subcilíndricos com extremidades obtusas, (3–)4–5 × 2 µm.
Características de cultura: Colônias em expansão, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, atingindo 35 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA superfície cinza oliváceo pálido, reverso cinza oliváceo; em PDA superfície cinza oliváceo no centro, escarlate na região externa, reverso escarlate com pigmento escarlate difuso; em OA superfície cinza oliváceo com manchas de escarlate e pigmento escarlate difuso.
Tipo: Alemanha, perto de Berlim, em ramo de Salix alba (Salicaceae), 21 jan. 2017, R.K. Schumacher, HPC 1956 (holótipo CBS H-23817, cultura ex-tipo CPC 33154 = CBS 144617).
Notas: Morfologicamente, Jeremyomyces é semelhante a Angustimassarina, exceto por apresentar um morfo assexuado coelomiceto. Estranhamente, a sequência de LSU agrupa-se com a sequência tipo de Acericola italica, um fungo que é morfologicamente bastante distinto, apresentando ascósporos castanhos, trisseptados. Isso sugere que a sequência do GenBank de Acericola está incorreta. Com base nessa sequência, no entanto, este fungo foi colocado em um novo gênero, Acericola, em vez de Setomelanomma, que é provavelmente onde ele pertence.
Com base em uma busca megablast do banco de dados de nucleotídeos do GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Acericola italica (GenBank NR_156344.1; Identidades = 523/534 (98 %), 3 lacunas (0 %)), Xenophoma puncteliae (como Phoma sp. JDL-2012a, GenBank JQ238617.1; Identidades = 553/578 (96 %), 9 lacunas (1 %)) e Phaeosphaeria caricis (GenBank KY090633.1; Identidades = 536/583 (92 %), 13 lacunas (2 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Acericola italica (GenBank MF167429.1; Identidades = 883/883 (100 %), sem lacunas), Phaeosphaeria sowerbyi (GenBank MH873687.1; Identidades = 891/896 (99 %), sem lacunas) e Phaeosphaeria herpotrichoides (GenBank MH873664.1; Identidades = 891/896 (99 %), sem lacunas). Nenhuma correspondência significativa foi obtida quando a sequência cmdA foi usada em buscas blastn e megablast. Correspondências distantes usando a sequência rpb2 tiveram maior similaridade com Phaeosphaeriopsis triseptata (GenBank KJ522486.1; Identidades = 877/1003 (87 %), 2 lacunas (0 %)), Hawksworthiana alliariae (como Dematiopleospora alliariae, GenBank KX507261.1; Identidades = 846/1008 (84 %), 1 lacuna (0 %)) e Dematiopleospora salsolae (GenBank MG829254.1; Identidades = 830/1005 (83 %), 2 lacunas (0 %)). Correspondências distantes usando a sequência tef1 tiveram maior similaridade com Didymocyrtis cladoniicola (como Diederichomyces cladoniicola, GenBank KP170668.1; Identidades = 435/521 (83 %), 16 lacunas (3 %)), Phaeosphaeria ammophilae (GenBank MF795877.1; Identidades = 411/495 (83 %), 30 lacunas (6 %)) e Chaetosphaeronema hispidulum (GenBank KF253108.1; Identidades = 394/472 (83 %), 23 lacunas (4 %)). Correspondências distantes usando a sequência tub2 tiveram maior similaridade com Xenophoma puncteliae (GenBank KP170711.1; Identidades = 249/278 (90 %), 1 lacuna (0 %)), Didymocyrtis banksiae (GenBank KY979923.1; Identidades = 245/279 (88 %), 9 lacunas (3 %)) e Phoma haematocycla (GenBank KT309405.1; Identidades = 239/272 (88 %), 3 lacunas (1 %)).
Macgarvieomyces luzulae (Ondřej) Y. Marín et al., Stud. Mycol. 92: 84. 2018 (2019). Fig. 26.
Basônimo: Pyricularia luzulae Ondřej, Ceská Mykol. 42: 81. 1988.
Conidióforos solitários, eretos, retos a flexuosos, subcilíndricos, não ramificados, de parede espessa, marrons, de parede lisa, 1–3-septados, surgindo de hifas aparentemente sem base intumescida, 60–120 × 5–6 µm. Células conidiogênicas integradas, terminais, marrom-claras, de parede lisa, subcilíndricas com estreitamento apical em direção a um raque de dentículos dispostos simpodialmente, 1–2 × 1–1,5 µm. Conídios solitários, marrom-claros, finamente rugosos, gutulados, fusoides, ápice apendiculado, base afinando em direção ao hilo proeminente, 1–1,5 µm de diâmetro, levemente escurecidos, (21–)22–23(–25) × (5,5–)6–7(–8) µm com um único septo transversal supramediano; quando esporulando em PNA, conídios germinativos formam apressórios que são marrons, irregularmente lobados, 5–10 µm de diâmetro, com um poro de infecção central hialino, 1 µm de diâmetro.
Características culturais: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo esparso e margem lisa, lobada, cobrindo a placa após 2 semanas a 25 °C. Em superfície e reverso de MEA açafrão; em superfície e reverso de PDA e OA amarelo pálido.
Material examinado: Ucrânia, distrito de Rakhiv, região Transcarpática, Sidlovyana stow, montanhas Petros, em Luzula sylvatica (Juncaceae), 9 de agosto de 2017, A. Akulov, CWU (MYC) AS 6437 = HPC 2197, CBS H-23833, cultura CPC 34292 = CBS 145042.
Notas: Macgarvieomyces foi introduzido para um gênero de fungos semelhante a Pyricularia na morfologia geral, mas que se distinguia deste último gênero por possuir conídios fusoides, 1-septados, e ocorrer em Juncaceae. Macgarvieomyces luzulae foi recentemente tratado por, e esta é a segunda coleta de Luzula sylvatica.
Com base em uma busca Megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, os hits mais próximos usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Macgarvieomyces luzulae (GenBank MG934442.1; Identidades = 548/548 (100%)), Macgarvieomyces borealis (GenBank NR_145384.1; Identidades = 485/517 (94%), 10 gaps (1%)) e Macgarvieomyces juncicola (GenBank KM009165.1; Identidades = 462/494 (94%), 11 gaps (2%)). Os hits mais próximos usando a sequência LSU são Macgarvieomyces juncicola (GenBank KM009153.1; Identidades = 854/864 (99%), 1 gap (0%)), Macgarvieomyces borealis (GenBank NG_058088.1; Identidades = 853/863 (99%), sem gaps) e Deightoniella roumeguerei (como Utrechtiana cibiessia, GenBank JF951176.1; Identidades = 877/895 (98%), sem gaps). Os hits mais próximos usando a sequência actA tiveram maior similaridade com Macgarvieomyces luzulae (GenBank MG934464.1; Identidades = 348/350 (99%), sem gaps), Macgarvieomyces borealis (GenBank KM485170.1; Identidades = 221/251 (88%), 9 gaps (3%)) e Macgarvieomyces juncicola (GenBank KM485171.1; Identidades = 252/318 (79%), 29 gaps (9%)).
Microdochium rhopalostylidis Crous & Thangavel, sp. nov. MycoBank MB829310. Fig. 27.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero Rhopalostylis do qual foi isolado.
Micélio imerso e superficial, composto por hifas hialinas, lisas, ramificadas, septadas, com 2–3 µm de diâmetro. Esporodóquios viscosos, hialinos, tornando-se marrom pálido com a idade. Conidióforos fortemente agregados, irregularmente ramificados, hialinos, lisos, 0–4-septados, 5–25 × 2,5–3,5 µm. Células conidiogênicas lisas, hialinas, ampuliformes, terminais e laterais com proliferação simpodial e loci de ponta plana inconspícuos, 4–10 × 3–3,5 µm. Conídios solitários, agregados em pacotes mucoides, hialinos, de parede lisa, gutulados, fusoides, curvos, ápice subobtuso, base truncada, 1–3-septados, (13–)16–20(–23) × (2,5–)3(–4) µm.
Características culturais: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, cobrindo a placa após 2 semanas a 25 °C. Em superfície de MEA e PDA açafrão a amarelo, reverso siena; em superfície de OA umbra a açafrão.
Typus: Nova Zelândia, Auckland, Jardim Botânico de Auckland, em folhas de Rhopalostylis sapida (Arecaceae), 2017, R. Thangavel, T17_03052B (holótipo CBS H-23835, cultura ex-tipo CPC 34449 = CBS 145125).
Nota: Microdochium e gêneros aliados foram revisados por. Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos do GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Pseudofusarium fusarioideum (GenBank MH860033.1; Identidades = 537/551 (97 %), 7 gaps (1 %)), Microdochium phragmitis (GenBank NR_132916.1; Identidades = 529/544 (97 %), 7 gaps (1 %)), e Microdochium lycopodinum (GenBank KP859005.1; Identidades = 529/544 (97 %), 8 gaps (1 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Microdochium phragmitis (GenBank KP858948.1; Identidades = 893/893 (100 %), sem gaps), Microdochium lycopodinum (GenBank KP858929.1; Identidades = 847/855 (99 %), sem gaps), e Microdochium fisheri (GenBank KP858951.1; Identidades = 825/844 (98 %), 2 gaps (0 %)). Correspondências distantes usando a sequência actA tiveram maior similaridade com Penicillifer pulcher (GenBank KM231107.1; Identidades = 406/420 (97 %), sem gaps), Penicillifer bipapillatus (GenBank KM231105.1; Identidades = 404/420 (96 %), sem gaps), e Gliocephalotrichum longibrachium (GenBank KM231117.1; Identidades = 403/419 (96 %), sem gaps). Apenas correspondências muito distantes foram obtidas usando a sequência cmdA, por exemplo com Penicillium johnkrugii (GenBank JN686399.1; Identidades = 135/142 (95 %), sem gaps), Penicillium exsudans (GenBank KX885052.1; Identidades = 133/139 (96 %), sem gaps), e Penicillium austrosinicum (GenBank KX885051.; Identidades = 133/139 (96 %), sem gaps). As correspondências mais próximas usando a sequência rpb2 tiveram maior similaridade com Microdochium phragmitis (GenBank KP859122.1; Identidades = 798/849 (94 %), sem gaps), Microdochium lycopodinum (GenBank KP859102.1; Identidades = 789/837 (94 %), sem gaps), e Microdochium fisheri (GenBank KP859124.1; Identidades = 750/841 (89 %), 2 gaps (0 %)). A melhor correspondência usando a sequência tub2 teve maior similaridade com Microdochium musae (GenBank MH108044.1; Identidades = 115/135 (85 %), 5 gaps (3 %)).
Neocordana malayensis Crous, sp. nov. MycoBank MB829313. Fig. 28.
Etimologia: O nome refere-se à Malásia, onde foi isolado.
Micélio consistindo de hifas marrom-claras, lisas, ramificadas, septadas, 2–3 µm de diâmetro. Conidióforos subcilíndricos, flexuosos, eretos, marrom-médios, lisos, multisseptados, 200–500 × 7–9 µm. Células conidiogênicas poliblásticas, terminais e intercalares, 10–40 × 6–8 µm, denticuladas; dentículos de até 1 µm de comprimento, 0,5–1 µm de largura. Conídios oblongos a obovoides, (12–)14–18(–20) × (8–)10 µm, 1-septados, de paredes espessas, marrons com hilo truncado, 1 µm de diâmetro.
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem plumosa, atingindo 65 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, PDA e OA superfície branco sujo com manchas de cinza oliváceo pálido ou luteo pálido.
Typus: Malásia, em folhas de Musa sp. (Musaceae), fev. 2010, P.W. Crous, HPC 1595 (holótipo CBS H-23812, cultura ex-tipo CPC 32837 = CBS 144604).
Notas: Neocordana foi introduzida para acomodar várias espécies de hifomicetos que causam uma doença foliar em Canna e Musa. As características morfológicas de N. malayensis se sobrepõem às de N. musae e N. musicola nas dimensões conidiais, mas são distintas por apresentar conidióforos muito longos e flexuosos. Filogeneticamente, também se agrupa separadamente de N. musae e N. musicola.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Neocordana musigena (GenBank KY979749.1; Identidades = 553/575 (96 %), 15 gaps (2 %)), Neocordana musarum (GenBank KY173425.1; Identidades = 553/575 (96 %), 15 gaps (2 %)) e Neocordana musae (GenBank LN713276.1; Identidades = 553/575 (96 %), 15 gaps (2 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Neocordana musicola (GenBank LN713287.1; Identidades = 843/847 (99 %), sem gaps), Neocordana musarum (GenBank KY173515.1; Identidades = 820/824 (99 %), sem gaps) e Neocordana musae (GenBank LN713290.1; Identidades = 873/878 (99 %), 1 gap (0 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência actA tiveram maior similaridade com Neocordana musigena (GenBank KY979854.1; Identidades = 746/746 (100 %), sem gaps), Neocordana musarum (GenBank KY173568.1; Identidades = 357/358 (99 %), sem gaps) e Gaeumannomyces tritici (GenBank XM_009225830.1; Identidades = 386/414 (93 %), sem gaps). As correspondências mais próximas usando a sequência tub2 tiveram maior similaridade com Neocordana musigena (GenBank KY979915.1; Identidades = 553/559 (99 %), 1 gap (0 %)), Hypoxylon calileguense (GenBank KU604578.1; Identidades = 714/797 (90 %), 1 gap (0 %)) e Chaetomium globosum (GenBank XM_001226965.1; Identidades = 654/735 (89 %), 2 gaps (0 %)).
Neocucurbitaria prunicola Crous & Akulov, sp. nov. MycoBank MB829314. Fig. 29.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero hospedeiro Prunus do qual foi isolado.
Conidiomas picnidiais, solitários a agregados, globosos, marrom médio, 100–200 µm de diâmetro, com ostíolo central, 20–40 µm de diâmetro, circundados por setas eretas, não ramificadas, marrons, lisas, 1–2-septadas, de parede espessa, 20–40(–70) × 3–4 µm, com extremidades obtusas; parede do conidioma de 3–4 camadas de textura angularis achatada, marrom. Conidióforos revestindo a cavidade interna, hialinos, lisos, subcilíndricos, ramificados, 1–3-septados, 10–20 × 2–3 µm. Células conidiogênicas hialinas, lisas, subcilíndricas a doliiformes, fialídicas, terminais e intercalares, 3–10 × 2–3 µm. Conídios hialinos, lisos, asseptados, gutulados, subcilíndricos com extremidades obtusas, (2–)3–3.5(–4) × 1.5(–2) µm.
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, atingindo 40 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, PDA e OA, superfície e reverso cinza oliváceo.
Typus: Ucrânia, região de Ternopil, Parque Nacional do Desfiladeiro do Dniester, floresta, galhos caídos de Prunus padus (= Padus avium) (Rosaceae), 6 de outubro de 2016, A. Akulov, CWU AS 6209 = HPC 2045 (holótipo CBS H-23824, cultura ex-tipo CPC 33709 = CBS 145033).
Notas: Neocucurbitaria foi tratada por e demonstrou ter morfos assexuais semelhantes a Phoma. Neocucurbitaria prunicola é filogeneticamente distinta de outras espécies atualmente conhecidas no gênero.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, os resultados mais próximos usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Neocucurbitaria rhamni (GenBank MF795778.1; Identidades = 446/483 (92%), 5 lacunas (1%)), Neocucurbitaria rhamnioides (GenBank MF795784.1; Identidades = 447/486 (92%), 7 lacunas (1%)) e Astragalicola vasilyevae (GenBank NR_157504.1; Identidades = 453/494 (92%), 13 lacunas (2%)). Os resultados mais próximos usando a sequência LSU são Neocucurbitaria unguis-hominis (GenBank GQ387621.1; Identidades = 850/854 (99%), sem lacunas), Neocucurbitaria keratinophila (GenBank MH874704.1; Identidades = 849/854 (99%), sem lacunas) e Neocucurbitaria quercina (GenBank GQ387620.1; Identidades = 849/854 (99%), sem lacunas). Os resultados mais próximos usando a sequência rpb2 tiveram maior similaridade com Neocucurbitaria unguishominis (como Pyrenochaeta unguis-hominis, GenBank LT717682.1; Identidades = 760/866 (88%), 2 lacunas (0%)), Cucurbitaria berberidis (GenBank LT854936.1; Identidades = 768/876 (88%), 7 lacunas (0%)) e Neocucurbitaria cava (como Pyrenochaeta cava, GenBank LT717681.1; Identidades = 744/856 (87%), 2 lacunas (0%)). Os resultados distantes usando a sequência tub2 tiveram maior similaridade com Neocucurbitaria juglandicola (GenBank MF795901.1; Identidades = 452/495 (91%), 2 lacunas (0%)), Neocucurbitaria populi (GenBank MF795902.1; Identidades = 451/495 (91%), 2 lacunas (0%)), Neocucurbitaria rhamnioides (GenBank MF795908.1; Identidades = 448/493 (91%), 7 lacunas (1%)), Leptosphaeria biglobosa (como Leptosphaeria maculans, GenBank FO906902.1; Identidades = 887/999 (89%), 11 lacunas (1%)), Leptosphaeria biglobosa (GenBank FO905876.1; Identidades = 877/987 (89%), 10 lacunas (1%)) e Helminthosporium solani (GenBank AF461130.1; Identidades = 702/803 (87%), 10 lacunas (1%)).
Neocucurbitaria salicis-albae Crous & R.K. Schumach., sp. nov. MycoBank MB829315. Fig. 30.
Etimologia: O nome refere-se a Salix alba, da qual foi isolada.
Conidiomas picnidiais, solitários ou agregados, marrons, globosos, 70–120 µm de diâmetro, com ostíolo central proeminente papilado marrom-escuro 1(–3), 20–30 µm de diâmetro; parede de 3–6 camadas de textura angular marrom-clara. Conidióforos revestindo a cavidade interna, hialinos, lisos, reduzidos a células conidiogênicas, ampuliformes, fiálidicas, 5–7 × 2,5–4 µm. Conídios solitários, asseptados, hialinos, lisos, proeminentemente gutulados, parede fina, subcilíndricos a fusoides-elipsoides, (2,5–)3–3,5(–4) × 2 µm.
Características de cultura: Colônias erumpentes, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, atingindo 17–30 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, PDA e OA, superfície e reverso cinza oliváceo.
Typus: Alemanha, próximo a Berlim, em ramo de Salix alba, 21 Jan. 2017, R.K. Schumacher, HPC 1963 (holótipo CBS H-23818, cultura ex-tipo CPC 33162 = CBS 144611).
Notas: Pyrenochaeta (= Cucurbitaria) foi ressuscitado como gênero discreto por). Neocucurbitaria foi estabelecido por) para um gênero irmão com morfos assexuais semelhantes a Pyrenochaeta e morfos sexuais semelhantes a Cucurbitaria. Neocucurbitaria e vários gêneros semelhantes a Pyrenochaeta e suas respectivas famílias foram esclarecidos posteriormente por. Neocucurbitaria salicis-albae é uma nova espécie de Salix.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Neocucurbitaria quercina (como Pyrenochaeta quercina, GenBank LT623220.1; Identidades = 519/533 (97 %), sem lacunas), Neocucurbitaria acanthocladae (GenBank MF795766.1; Identidades = 515/535 (96 %), 2 lacunas (0 %)), e Neocucurbitaria unguis-hominis (como Pyrenochaeta unguis-hominis, GenBank KP794081.1; Identidades = 472/490 (96 %), 7 lacunas (1 %)). A sequência ITS é idêntica a “Cucurbitariaceae sp. MUT 4403” (GenBank KC339238.1; Identidades = 491/491 (100 %)), isolada de Posidonia oceanica na Baía de Punta Manara-Riva Trigoso, Itália. As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Neocucurbitaria keratinophila (GenBank MH874704.1; Identidades = 859/861 (99 %), sem lacunas)), Neocucurbitaria quercina (GenBank GQ387620.1; Identidades = 859/861 (99 %), sem lacunas), e Neocucurbitaria aquatica (GenBank EU754177.1; Identidades = 859/861 (99 %), sem lacunas). As correspondências mais próximas usando a sequência rpb2 tiveram maior similaridade com Neocucurbitaria quercina (como Pyrenochaeta quercina, GenBank LT623277.1; Identidades = 919/956 (96 %), sem lacunas), Neocucurbitaria unguis-hominis (como Pyrenochaeta unguishominis, GenBank LT623279.1; Identidades = 872/952 (92 %), sem lacunas), e Neocucurbitaria aetnensis (GenBank MF795811.1; Identidades = 832/900 (92 %), sem lacunas). As correspondências mais próximas usando a sequência tub2 tiveram maior similaridade com Neocucurbitaria acanthocladae (GenBank MF795894.1; Identidades = 440/457 (96 %), 1 lacuna (0 %)), Neocucurbitaria cinereae (GenBank MF795899.1; Identidades = 438/457 (96 %), 1 lacuna (0 %)), Neocucurbitaria ribicola (GenBank MF795912.1; Identidades = 432/457 (95 %), 2 lacunas (0 %)), Leptosphaeria biglobosa (GenBank FO905876.1; Identidades = 932/1036 (90 %), 6 lacunas (0 %)), Westerdykella cylindrica (GenBank JX235707.1; Identidades = 689/777 (89 %), 10 lacunas (1 %)), e Helminthosporium solani (GenBank AF461130.1; Identidades = 745/861 (87 %), 12 lacunas (1 %)).
Neodevriesia metrosideri Crous, Persoonia 41: 303. 2018. Fig. 31.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero hospedeiro Metrosideros do qual foi isolado.
Micélio constituído por hifas ramificadas, septadas, marrons, lisas, com 3(–5) µm de diâmetro. Conidióforos eretos, solitários, surgindo diretamente de hifas superficiais, subcilíndricos, retos a ligeiramente curvados, lisos, marrons, 0–2-septados, 10–30 × 2–3 µm. Células conidiogênicas terminais, integradas, subcilíndricas, marrons, lisas, 5–10 × 2–3 µm; hilos truncados, 2–3 µm de diâmetro, não escurecidos nem espessados. Conídios ocorrendo em cadeias ramificadas (–15), marrom médio, lisos, subcilíndricos a fusoides-elipsoides, 0–1(–2)-septados, (10–)13–15(–20) × 2–3(–4) µm; hilos não espessados, não escurecidos, 1,5–2 µm de diâmetro.
Características de cultura: Colônias erupentes, com micélio aéreo moderado e margens lisas, lobadas, atingindo 20 mm de diâmetro após 2 semanas. Em MEA, BDA e AV, superfície e reverso cinza-ferro.
Material examinado: Nova Zelândia, Auckland, Bucklands Beach, 22 Wells Road, em folhas de Metrosideros excelsa (Myrtaceae), 2015, R. Thangavel, T16_03926G, CBS H-23810, cultura CBS 144638 = CPC 32786.
Notas: Neodevriesia metrosideri foi recentemente descrita a partir de Metrosideros sp. na Ilha Great Barrier, na Nova Zelândia, e esta é a segunda coleta deste táxon neste país.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, os hits mais próximos usando a sequência de ITS tiveram maior similaridade com Neodevriesia lagerstroemiae (GenBank GU214634.1; Identidades = 518/533 (97 %), 4 gaps (0 %)), Neodevriesia fraserae (como Devriesia fraseriae, GenBank NR_144961.1; Identidades = 508/535 (95 %), 9 gaps (1 %)) e Devriesia sardiniae (GenBank KP791766.1; Identidades = 504/531 (95 %), 4 gaps (0 %)). Os hits mais próximos usando a sequência de LSU são Neodevriesia lagerstroemiae (GenBank KF902149.1; Identidades = 732/741 (99 %), sem gaps), Neodevriesia knoxdaviesii (como Teratosphaeria knoxdaviesii, GenBank EU707865.1; Identidades = 801/814 (98 %), 2 gaps (0 %)) e Neodevriesia cladophorae (como Devriesia sp. MW-2016a, GenBank KU578114.1; Identidades = 798/813 (98 %), sem gaps). Nenhuma sequência de actA de Neodevriesia ou Devriesia está atualmente disponível para comparação no GenBank. Nenhum hit significativo foi obtido quando a sequência de tub2 foi usada em buscas blastn e megablast.
Neodothidotthia Crous, gen. nov. MycoBank MB829317.
Etimologia: O nome reflete sua similaridade morfológica com o gênero Dothidotthia.
Esporodóquios marrom-escuros, punctiformes. Estromas imersos a superficiais, marrons. Conidióforos marrons, finamente rugosos, subcilíndricos, septados. Células conidiogênicas marrons, subcilíndricas, finamente rugosas, proliferando percurrentemente no ápice. Conídios fusoides a elipsoides, marrom médio, transversalmente septados, ápice obtuso, base truncada.
Espécie-tipo: Neodothidotthia negundinicola Crous & Akulov.
Neodothidotthia negundinicola Crous & Akulov, sp. nov. MycoBank MB829318. Fig. 32.
Etimologia: O nome refere-se a Acer negundo, do qual foi isolado.
Esporodóquios marrom-escuros, puntiformes, 100–300 µm diâm. Estromas imersos a superficiais, marrons, 80–150 µm diâm. Conidióforos marrons, finamente rugosos, subcilíndricos, 4–6-septados, 60–150 × 7–12 µm. Células conidiogênicas marrons, subcilíndricas, finamente rugosas, 8–15 × 5–7 µm, proliferando percurrentemente no ápice. Conídios fusoides a elípticos, marrom-médios, transversalmente (1–)2-septados, ápice obtuso, base truncada, 4–5 µm diâm., (25–)30–35(–37) × (12–)13–15(–16) µm.
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lisa a plumosa, lobada, cobrindo a placa após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, BDA e OA superfície e reverso cinza-oliváceo.
Típico: Ucrânia, região de Kharkiv, distrito de Zolochiv, em ramos mortos de Acer negundo (Sapindaceae) ainda presos à árvore, 28 de maio de 2017, A. Akulov & R.K. Schumacher, CWU AS 6293 = HPC 2127 = RKS 116 (holótipo CBS H-23832, cultura ex-tipo CPC 34071 = CBS 145039).
Neodothidotthia negundinis (Berk. & M.A. Curtis) Crous, comb. nov. MycoBank MB829319.
Basiónimo: Coryneum negundinis Berk. & M.A. Curtis, Grevillea 2(22): 153. 1874.
Sinônimo: Thyrostroma negundinis (Berk. & M.A. Curtis) A.W. Ramaley, Mycotaxon 94: 131. 2006 (2005).
Ilustração: Ver.
Material examinado: EUA, Colorado, Durango, 7 Animas Place, ramos mortos de Euonymus alatus, 29 de jun. de 2004, A.W. Ramaley 0411, BPI 871820, cultura CPC 12930 = CBS 119688; Colorado, Durango, entre Animas Place e o Rio Animas, ramos mortos de Acer negundo, 8 de jul. de 2004, A.W. Ramaley 0414, BPI 871819, morfo assexuado cultura CPC 12933 = CBS 119691, morfo sexuado CPC 12932 = CBS 119690; Colorado, Condado de La Plata, aprox. 1,75 milhas subindo a Trilha Carbon Junction, ramos mortos de Fendlera rupicola, 11 de maio de 2004, A.W. Ramaley 0403, BPI 871821, cultura CPC 12928 = CBS 119686.
Notas: Thyrostroma negundinis (como Stigmina negundinis, em ramos de Acer negundo, América do Norte) possui conídios que são elípticos, 2-septados, 25–38 × 12–18 µm, base 4–5 µm diâm., ajustando-se de perto com a presente coleção, embora sejam filogeneticamente distintos. encontraram conídios no espécime-tipo de Amphisphaeria aspera muito menores, ou seja, (10–)12–15 × 6–7 µm, sugerindo que a última coleção representa uma espécie diferente neste complexo.
e mostraram que Dothidotthia (baseada em D. symphoricarpi dos EUA; CBS 119687) possui um morfo assexuado Thyrostroma (baseado em T. compactum, linhagem de referência CBS 335.37), que eles atribuíram a Thyrostroma negundinis. A ligação entre os dois gêneros, no entanto, não foi confirmada em cultura. Assim, foi proposto continuar usando ambos os nomes até que esta questão seja resolvida (Wijayawardene et al. 2014,). Como mostramos aqui, Thyrostroma é estreitamente relacionado, mas não congenérico com Dothidotthia, portanto ambos os nomes genéricos devem ser mantidos. Além disso, a coleção europeia de “Thyrostroma negundinis” é relacionada a D. symphoricarpi, mas é filogeneticamente distinta e, portanto, descrita aqui como um novo gênero, Neodothidotthia.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, os resultados mais próximos usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Thyrostroma cornicola (GenBank NR_154514.1; Identidades = 517/540 (96 %), 6 lacunas (1 %)), Thyrostroma compactum (GenBank MH859911.1; Identidades = 516/540 (96 %), 6 lacunas (1 %)), e Phaeomycocentrospora cantuariensis (GenBank MH866055.1; Identidades = 515/539 (96 %), 6 lacunas (1 %)). Os resultados mais próximos usando a sequência LSU são Phaeomycocentrospora cantuariensis (GenBank GU253716.1; Identidades = 866/877 (99 %), 2 lacunas (0 %)), Pleiochaeta setosa (GenBank EU167563.1; Identidades = 847/859 (99 %), 3 lacunas (0 %)), e Pleiochaeta ghindensis (GenBank EU167561.1; Identidades = 845/858 (98 %), 2 lacunas (0 %)). Os resultados mais próximos usando a sequência tef1 tiveram maior similaridade com Phaeomycocentrospora cantuariensis (GenBank GU384382.1; Identidades = 265/308 (86 %), 9 lacunas (2 %)), Thyrostroma cornicola (GenBank KX228372.1; Identidades = 312/372 (84 %), 12 lacunas (3 %)), e Pyrenophora biseptata (como Drechslera biseptata, GenBank JN712588.1; Identidades = 321/402 (80 %), 30 lacunas (7 %)).
Neohelicomyces deschampsiae Crous & R.K. Schumach., sp. nov. MycoBank MB829320. Fig. 33.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero hospedeiro Deschampsia do qual foi isolado.
Conidióforos eretos, flexuosos, principalmente não ramificados, subcilíndricos com leve afilamento apical, 10–15-septados, 150–220 × 3–4 µm, marrons, de parede lisa, afinando em direção ao ápice subobtuso. Células conidiogênicas intercalares, consistindo de pequenas projeções laterais cilíndricas, marrom-claras, monoblásticas, raramente poliblásticas, 2–5 × 1,5–2,5 µm. Conídios solitários, enrolados 2–3 vezes, multiseptados, espirais com 19–22 µm de diâmetro, células com 2–2,5 µm de diâmetro.
Características de cultura: Colônias erupentes, espalhadas, com superfície dobrada e margem lobada plumosa, atingindo 20 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA superfície marrom-escura, reverso siena; em PDA superfície marrom-escura, reverso ocre; em OA superfície marrom-escura.
Tipo: Alemanha, perto de Berlim, base do colmo de bainha foliar morta de Deschampsia cespitosa (Poaceae), 3 de maio de 2017, R.K. Schumacher, HPC 2109 = RKS 101 (holótipo CBS H-23590, cultura ex-tipo CPC 33686 = CBS 145029).
Notas: Neohelicomyces difere de Tubeufia e gêneros aliados, especialmente de Helicomyces, por possuir conidióforos alongados, eretos e conspícuos, e difere de Helicosporium com base na morfologia conidial. Com base nas espécies conhecidas a partir de seu DNA, N. deschampsiae parece representar uma nova espécie, sendo filogeneticamente distinta de T. helicomyces e T. paludosa, que também foram relatadas neste hospedeiro.
Com base em uma pesquisa megablast no banco de dados GenBank do NCBI, os resultados mais próximos usando a sequência ITS apresentaram maior similaridade com Tubeufia helicomyces (GenBank MH857031.1; Identidades = 556/591 (94%), 18 gaps (3%)), Helicosporium lumbricoides (GenBank MH856861.1; Identidades = 554/590 (94%), 16 gaps (2%)), Helicosporium pallidum (GenBank AY916462.1; Identidades = 550/586 (94%), 16 gaps (2%)) e Neohelicomyces aquaticus (como Tubeufiaceae sp. ZL-2017b, GenBank KY320528.1; Identidades = 422/452 (93%), 20 gaps (4%)). Os resultados mais próximos usando a sequência LSU são Neohelicomyces aquaticus (como Tubeufiaceae sp. ZL-2017b, GenBank KY320545.1; Identidades = 849/849 (100%), sem gaps), Neohelicomyces hyalosporus (como Neohelicomyces sp. YZL-2018a, GenBank MH558870.1; Identidades = 841/843 (99%), sem gaps), Neohelicomyces submersus (como Tubeufiaceae sp. ZL-2017c, GenBank KY320547.1; Identidades = 827/830 (99%), sem gaps) e Tubeufia helicomyces (GenBank MH868562.1; Identidades = 854/860 (99%), sem gaps).
Neomedicopsis Crous & Akulov, gen. nov. MycoBank MB829321.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero Medicopsis, ao qual está filogeneticamente relacionado.
Conidiomas picnidiais, globosos, erumpentes com ostíolo central; parede com 6–12 camadas de textura angular marrom. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas, hialinas, lisas, ampuliformes com longo colo cilíndrico, proliferando percurrentemente. Conídios solitários, globosos a subglobosos, inicialmente marrom-claros, tornando-se marrom-escuros, de parede espessa, gutulados, granulares, ápice obtuso, base truncada.
Espécie-tipo: Neomedicopsis prunicola Crous & Akulov.
Neomedicopsis prunicola Crous & Akulov, sp. nov. MycoBank MB829322. Fig. 34.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero hospedeiro Prunus do qual foi isolado.
Conidiomas picnidiais, globosos, 200–300 µm de diâmetro, erumpentes com ostíolo central; parede com 6–12 camadas de textura angular marrom. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas, hialinas, lisas, ampuliformes com longo colo cilíndrico, 10–30 × 3–6 µm, proliferando percurrentemente. Conídios solitários, globosos a subglobosos, inicialmente marrom-claros, tornando-se marrom-escuros, de parede espessa, gutulados, granulares, ápice obtuso, base truncada, 3–4 µm de diâmetro, (12–)17–20(–22) × (12–)14–16(–17) µm.
Características de cultivo: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, atingindo 25 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, superfície cinza-oliváceo pálido, reverso cinza-oliváceo; em PDA, superfície e reverso cinza-oliváceo; em OA, superfície cinza-oliváceo.
Tipo: Ucrânia, região de Ternopil, Parque Nacional do Desfiladeiro do Dniester, floresta, galhos caídos de Prunus padus (= Padus avium) (Rosaceae), 6 out. 2016, A. Akulov, HPC 2045 = CWU AS 6209 (holótipo CBS H-23825, cultura ex-tipo CPC 33711 = CBS 145031).
Notas: introduziu o gênero Medicopsis para acomodar P. romeroi, um patógeno associado ao micetoma em humanos. Medicopsis possui morfologia semelhante a Phoma, e Neomedicopsis
Pseudostroma imerso, tornando-se erupente, causando fissuras; ectostroma marrom-claro a cinza, contendo perifíses densamente agrupadas; ostíolos cilíndricos, inconspícuos com paredes marrons, não projetados; entostroma confinado a uma rede de hifas marrom-claras, envolvendo um grupo circular de ascomas periteciais densamente agrupados com ostíolos convergentes. Peritécios globosos a lenticulares, marrom-escuros, parede de textura angular. Paráfises entremeadas entre as ascas, hialinas, septadas, não ramificadas, constritas nos septos, semelhantes a hifas. Ascas elipsoides a fusoides, com 8 ascósporos bisseriados, sem canal refrativo no ápice (reagente de Melzer). Ascósporos elipsoide-fusoides, marrons, 1-euseptados, de parede espessa, com apêndice gelatinoso em cada extremidade truncada, lisos, tornando-se verruculosos com a idade, granulares a gutulados, com ápices truncados e apículo central. Conidiomas imersos na casca, picnidiais, multiloculares, formando um longo pescoço. Paráfises hialinas, cilíndricas, septadas, não ramificadas, semelhantes a hifas. Conidióforos subcilíndricos, hialinos a marrom-claros, septados, não ramificados. Células conidiogênicas cilíndricas, hialinas a marrom-claras, proliferando percurrentemente com numerosas proliferações percursivas no ápice. Conídios elipsoides a oblongos, retos a levemente curvos, de parede espessa, gutulados, transversalmente euseptados com septos oblíquos.
Espécie-tipo: Neophaeoappendicospora leucaenae Crous & M.J. Wingf.
Neophaeoappendicospora leucaenae Crous & M.J. Wingf., sp. nov. MycoBank MB829324. Fig. 35.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero hospedeiro Leucaena do qual foi isolado.
Pseudostroma imerso na casca, com até 2 mm de diâmetro, tornando-se erumpente, causando fissuras; ectostroma marrom-claro a cinza, contendo perifises densamente agrupadas; ostíolos cilíndricos, inconspícuos com paredes marrons, não projetados; entostroma confinado a uma rede de hifas marrom-claras, envolvendo um grupo circular de até 12 ascomas periteciais densamente agrupados com ostíolos convergentes. Peritécios globosos a lenticulares, marrom-escuros, parede de textura angular. Paráfises entremeadas entre os ascos, hialinas, septadas, não ramificadas, constritas nos septos, semelhantes a hifas, 5–6 µm de diâmetro. Ascos elipsoides a fusoides, com 8 ascósporos bisseriados, sem canal refrativo no ápice (reagente de Melzer), 130–180 × 17–25 µm. Ascósporos elipsoide-fusoides, marrons, 1-euseptados, de parede espessa, com apêndice gelatinoso em cada extremidade truncada, lisos, tornando-se verruculosos com a idade, granulares a gutulados, (34–)36–42(–47) × (9–)10(–11) µm; às vezes ligeiramente inchados no septo (parede aparentemente espessada) e ápices truncados com apículo central. Conidiomas imersos na casca, picnidiais, com até 800 µm de diâmetro, multiloculares, formando um longo pescoço no hospedeiro, com até 1 mm de altura. Paráfises hialinas, cilíndricas, septadas, não ramificadas, semelhantes a hifas, 3–4 µm de diâmetro. Conidióforos subcilíndricos, hialinos a marrom-claros, 0–2-septados, não ramificados, 15–50 × 4–6 µm. Células conidiogênicas cilíndricas, hialinas a marrom-claras, proliferando percurrentemente com numerosas proliferações percurrentes no ápice, 15–30 × 4–6 µm. Conídios elipsoides a oblongos, retos a ligeiramente curvos, de parede espessa, gutulados, 3-transversalmente euseptados com 1–3 septos oblíquos, ápice obtuso, base truncada, 3–4 µm de diâmetro, (24–)26–29(–34) × (11–)12(–13) µm.
Características de cultura: Colônias erumpentes, com micélio aéreo esparso, crescimento lento, com margens lobadas. Em superfície de MEA, marrom-escuro com manchas de branco sujo, reverso castanho. Em superfície de PDA, marrom-escuro, reverso marrom-escuro com manchas de pigmento siena difuso. Em superfície de OA, isabelino.
Tipo: França, Ilha da Reunião, caules de Leucaena leucocephala (Fabaceae), 13 mar. 2014, M.J. Wingfield, HPC 309 (holótipo CBS H-23794, cultura ex-tipo CPC 27240).
Notas: Neophaeoappendicospora é morfologicamente semelhante a Phaeoappendicospora, que foi estabelecido como gênero monotípico por para um fungo ocorrente em galhos mortos de Quercus na Tailândia. Neophaeoappendicospora leucaenae é distinta de P. thailandensis (ascósporos 26–34,5 × 11–13 μm) por seus ascósporos maiores e pelo fato de que Neophaeoappendicospora forma prontamente uma morfologia assexuada em cultura, ausente em Phaeoappendicospora. Phaeoappendicospora e Neophaeoappendicospora representam gêneros em uma nova família, aqui introduzida como Phaeoappendicosporaceae.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS apresentaram maior similaridade com Diaporthe australafricana (GenBank KR534731.1; Identidades = 395/458 (86 %), 22 lacunas (4 %)), Diaporthe phaseolorum (GenBank LC171670.1; Identidades = 505/615 (82 %), 55 lacunas (8 %)) e Diaporthe helianthi (GenBank MF033502.1; Identidades = 505/615 (82 %), 55 lacunas (8 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Pachytrype rimosa (GenBank FJ532381.1; Identidades = 806/851 (95 %), 8 lacunas (0 %)), Hapalocystis berkeleyi (GenBank MG548637.1; Identidades = 797/844 (94 %), 6 lacunas (0 %)) e Melanconium elaeidicola (GenBank NG_058172.1; Identidades = 803/851 (94 %), 5 lacunas (0 %)).
Ochroconis musae (G.Y. Sun & Lu Hao) Samerp. & de Hoog, Mycol. Progr. 14 (no. 6): 8. 2015. Fig. 36.
Basônimo: Scolecobasidium musae G.Y. Sun & Lu Hao, Mycol. Progr. 12: 492. 2012 (2013).
Sinônimo: Ochroconis mirabilis Samerp. & de Hoog, Fungal Divers. 65: 110. 2013 (2014).
Micélio constituído por hifas marrom-claras, lisas, ramificadas, septadas, com 1,5–2 µm de diâmetro. Conidióforos eretos a flexuosos, surgindo de hifas vegetativas, subcilíndricos, 1–3-septados, 7–40 × 2,5–3 µm, ramificados ou não, marrons, de parede lisa, proliferando simpodialmente com vários dentículos de 1–2 × 1 µm; células conidiogênicas 7–12 × 1,5–3 µm. Conídios subcilíndricos, (8–)11–13(–16) × (2,5–)3(–4) µm, de parede lisa, marrom-claros, 1(–3)-septados, tornando-se verruculosos e constritos nos septos com a idade, ápice obtuso, afinando para um hilo truncado, com 1 µm de diâmetro.
Características de cultura: Colônias erumpentes, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, atingindo 25 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, superfície umber com pigmento siena difuso, reverso castanho; em PDA, superfície e reverso umber; em OA, superfície umber.
Material examinado: Tailândia, Chiang Mai, em tricomas foliares de Persea americana (Lauraceae), 2008, P.W. Crous, CBS H-23830, cultura CPC 33947 = CBS 145061.
Notas: Ochroconis possui conidióforos pigmentados e conidiogênese simpodial com dentículos que dão origem a conídios septados, pigmentados e verruculosos. A presente coleção está intimamente relacionada a O. musae.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Ochroconis musae (GenBank KT272078.1; Identidades = 581/588 (99 %), sem gaps), Acroconidiellina arecae (GenBank KX306747.1; Identidades = 663/672 (99 %), 2 gaps (0 %)), e Ochroconis musae (como Ochroconis mirabilis, GenBank KF156028.1; Identidades = 580/589 (98 %), 1 gap (0 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Ochroconis musae (como Ochroconis mirabilis, GenBank KF156139.1; Identidades = 791/793 (99 %), sem gaps), Ochroconis musae (GenBank KT272086.1; Identidades = 815/818 (99 %), 2 gaps (0 %)), e Ochroconis dracaenae (GenBank MH878221.1; Identidades = 808/813 (99 %), sem gaps). As correspondências mais próximas usando a sequência actA tiveram maior similaridade com Ochroconis mirabilis (GenBank HQ916972.1; Identidades = 263/264 (99 %), sem gaps), Ochroconis constricta (GenBank KF155942.1; Identidades = 263/264 (99 %), sem gaps), e Ochroconis musae (como Ochroconis mirabilis, GenBank KT272055.1; Identidades = 263/264 (99 %), sem gaps). As correspondências mais próximas usando a sequência tef1 tiveram maior similaridade com Ochroconis humicola (GenBank AB564640.1; Identidades = 430/433 (99 %), sem gaps), Ochroconis dracaenae (GenBank KX228377.1; Identidades = 492/510 (96 %), 1 gap (0 %)), e Ochroconis musae (GenBank KF156002.1; Identidades = 367/370 (99 %), sem gaps).
Paradevriesiaceae Crous, fam. nov. MycoBank MB829459.
Paradevriesia Crous, gen. nov. MycoBank MB829325.
Etimologia: O nome reflete o fato de ser filogeneticamente aparentada a Devriesia s.str.
Micélio consistindo de hifas ramificadas, septadas, de largura irregular, lisas a verruculosas, por vezes formando cordões de hifas e espirais de hifas; hifas frequentemente formando clamidósporos de parede espessa, intercalares, muriformemente septados, de cor marrom-escura em cultura. Conidióforos macro e micronematosos, subcilíndricos, marrom-médios, retos a irregularmente curvos, septados, ou reduzidos a células conidiogênicas. Células conidiogênicas terminais ou laterais nas hifas, marrom-médias, lisas, gutuladas, subcilíndricas, mono a poliblásticas; cicatrizes algo escurecidas e espessadas, mas não refringentes. Conídios marrom-médios, gutulados, lisos, em cadeias geralmente não ramificadas, subcilíndricos a estreitamente elipsoidais, septados; hilos escurecidos, algo espessados, não refringentes.
Espécie-tipo: Paradevriesia americana (Arzanlou & Crous) Crous.
Paradevriesia americana (Crous & Dugan) Crous, comb. nov. MycoBank MB829326.
Basônimo: Devriesia americana Crous & Dugan, Stud. Mycol. 58: 42. 2007.
Paradevriesia pseudoamericana (J. Frank et al.) Crous, comb. nov. MycoBank MB829328.
Basônimo: Devriesia pseudoamericana J. Frank et al., Persoonia 24: 97. 2010.
Notas: Embora morfologicamente semelhantes, os membros de Paradevriesia têm uma ecologia diferente dos membros de Devriesia s. str., que geralmente ocorrem no solo e são termotolerantes. As espécies de Paradevriesia são atualmente conhecidas por superfícies de plantas e rochas, e não crescem em altas temperaturas. Filogeneticamente, Paradevriesia também representa uma família distinta em Capnodiales.
Pararamichloridium livistonae Crous, Persoonia 39: 357. 2017. Fig. 37.
Micélio composto por hifas hialinas, lisas, ramificadas, septadas, com 2–3 µm de diâmetro. Conidióforos solitários, cilíndricos, eretos, retos a flexuosos, surgindo de hifas superficiais, castanho-claros, lisos, 2–6-septados, 25–65 × 2,5–3 µm. Células conidiogênicas terminais, integradas, cilíndricas, castanho-claras, lisas, 14–20 × 2,5–3 µm, com ráquis terminal de dentículos curtos agregados, 1 × 1 µm, de ponta achatada, não escurecidos nem espessados. Conídios asseptados, solitários, hialinos, de parede lisa, fusoides-elipsoides a clavados, ápice obtuso, afinando do meio para o hilo truncado, 0,5 µm de diâmetro, ligeiramente refletivos, 7–8 × 2–2,5 µm.
Características de cultura: Colônias erumpentes, extensas, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, atingindo 15 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, superfície e reverso siena com pigmento siena difuso; em PDA, superfície luteolada pálida, reverso siena com pigmento siena difuso; em OA, superfície luteolada pálida.
Material examinado: Austrália, Nova Gales do Sul, Parque Nacional Murramarang, em folhas de Livistona australis (Arecaceae), nov. 2016, P.W. Crous, CBS H-23800, cultura CPC 32152 = CBS 144522.
Notas: Pararamichloridium livistonae foi descrito a partir de folhas de Livistona australis coletadas na Austrália, e o isolado CPC 32152 representa a segunda coleta deste fungo da localidade-tipo.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, os resultados mais próximos usando a sequência de ITS tiveram maior similaridade com Pararamichloridium livistonae (GenBank NR_156652.1; Identidades = 616/617 (99 %), sem gaps), Pararamichloridium verrucosum (GenBank NR_156653.1; Identidades = 380/447 (85 %), 22 gaps (4 %)) e Paramicrothyrium chinense (GenBank KM246198.1; Identidades = 507/632 (80 %), 63 gaps (9 %)). Os resultados mais próximos usando a sequência de LSU são Pararamichloridium livistonae (GenBank NG_058504.1; Identidades = 834/835 (99 %), 1 gap (0 %)), Pararamichloridium verrucosum (GenBank MH873621.1; Identidades = 844/877 (96 %), 2 gaps (0 %)) e Magnaporthiopsis poae (GenBank KM401651.1; Identidades = 824/870 (95 %), 3 gaps (0 %)).
Pararoussoella juglandicola Crous & R.K. Schumach., sp. nov. MycoBank MB829329. Fig. 38.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero hospedeiro Juglans do qual foi isolado.
Conidiomas erumpentes, globosos, marrons, picnidiais, 150–300 µm de diâmetro com ostíolo central, exsudando uma massa conidial preta. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas revestindo a cavidade interna, hialinas, lisas, ampuliformes a doliiformes, fialídicas com espessamento periclinal no ápice, 5–7 × 4–5 µm. Conídios asseptados, solitários, subcilíndricos, gutulados, ápice arredondado obtuso, base truncada, hialinos tornando-se marrons, lisos, (5–)6(–7) × (2.5–)3 µm.
Características culturais: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem plumosa, lobada, atingindo 60 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, BDA e OA, superfície e reverso cinza oliváceo.
Tipo: Alemanha, perto de Berlim, em ramo de Juglans regia (Juglandaceae), 21 Jan. 2017, R.K. Schumacher, HPC 1953 = RKS 12 (holótipo CBS H-23820, cultura ex-tipo CPC 33400 = CBS 145037).
Pararoussoella mukdahanensis (Phook. et al.) Crous, comb. nov. MycoBank MB829330.
Basônimo: Roussoella mukdahanensis Phook. et al., Fungal Diversity 82: 32. 2016 (2017).
Notas: Espécies de Thyridariaceae são comumente isoladas de vários substratos vegetais. A família foi recentemente tratada por, no qual o gênero Pararoussoella foi estabelecido com base em sua distinta relação filogenética com Roussoella. Pararoussoella juglandicola representa um novo membro do gênero, o qual é filogeneticamente distinto de outras espécies, incluindo Roussoella mukdahanensis, para a qual uma nova combinação é necessária.
Com base em uma busca megablast do banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, os resultados mais próximos usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Roussoella mukdahanensis (GenBank NR_155722.1; Identidades = 488/497 (98 %), 1 lacuna (0 %)), Pararoussoella rosarum (GenBank NR_157529.1; Identidades = 492/505 (97 %), 4 lacunas (0 %)), e Aaosphaeria arxii (GenBank MH872962.1; Identidades = 541/587 (92 %), 7 lacunas (1 %)). Resultados mais próximos usando a sequência LSU são Roussoella neopustulans (GenBank KJ474841.1; Identidades = 824/837 (98 %), sem lacunas), Arthopyrenia salicis (GenBank KP671722.1; Identidades = 852/866 (98 %), sem lacunas), e Roussoella pustulans (GenBank AB524623.1; Identidades = 820/834 (98 %), sem lacunas). Resultados distantes usando a sequência rpb2 tiveram maior similaridade com Roussoella percutanea (GenBank KF366453.1; Identidades = 575/710 (81 %), 10 lacunas (1 %)), Parathyridaria percutanea (GenBank LT797063.1; Identidades = 730/905 (81 %), 6 lacunas (0 %)) e Flammeascoma lignicola (GenBank KT324586.1; Identidades = 696/898 (78 %), 8 lacunas (0 %)). Resultados muito distantes usando a sequência tef1 tiveram maior similaridade com Roussoella scabrispora (GenBank KX650537.1; Identidades = 130/140 (93 %), sem lacunas), Thyrostroma franseriae (GenBank KY905680.1; Identidades = 203/235 (86 %), 3 lacunas (1 %)), Stachybotrys limonispora (GenBank KU847058.1; Identidades = 131/136 (96 %), sem lacunas), e Trichoderma applanatum (GenBank KJ634759.1; Identidades = 141/150 (94 %), 3 lacunas (2 %)).
Petriella sordida (Zukal) G.L. Barron & J.C. Gilman, Canad. J. Bot. 39: 839. 1961. Fig. 39.
Basiónimo: Microascus sordidus Zukal, Ber. dt. bot. Ges. 8: 297. 1890.
Conidióforos sinematosos, eretos, flexuosos, marrom oliváceos, lisos, surgindo de um estroma basal reduzido, consistindo de numerosos (30–100) conidióforos individuais, septados (septos com 10–30 µm de distância), 250–350 µm de comprimento, estipe (7–)15–30(–90) µm de diâmetro, com cabeça conidiogênica alargada, contendo uma massa conidial mucoide marrom olivácea. Células conidiogênicas subcilíndricas, oliváceas, lisas, 10–25 × 2–2,5 µm, proliferando inconspicuamente percurrentemente no ápice. Conídios solitários, asseptados, gutulados, lisos, subcilíndricos, ápice obtuso, ligeiramente constritos no meio, base truncada, 2 µm de diâmetro, ligeiramente escurecidos, (7–)9–10(–12) × (3–)3,5(–4) µm.
Características de cultivo: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, atingindo 25 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA superfície açafrão, reverso ocre; em PDA superfície lutea pálida, reverso camurça; em OA superfície camurça.
Material examinado: Ucrânia, distrito de Rakhiv, região Transcarpática, em folhas de Luzula sp. (Juncaceae), nov. 2016, A. Akulov, HPC 1497, CBS H-23801, cultura CBS 144612 = CPC 32460).
Notas: Espécies de Petriella são comumente isoladas do solo e de fezes, e assim supõe-se que o isolado no presente estudo foi provavelmente um oportunista em folhas de Luzula sp. Petriella sordida foi descrita como tendo sinemas com conídios medindo (5–)6,5–11,5(–14) × 2,5–5,5 µm.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, os resultados mais próximos utilizando a sequência de ITS do CPC 32460 apresentaram maior similaridade com Petriella sordida (GenBank MH863637.1; Identidades = 564/565 (99 %), sem lacunas), Melanospora asymmetrica (GenBank KY628677.1; Identidades = 554/556 (99 %), sem lacunas) e Petriella guttulata (GenBank MF782707.1; Identidades = 558/565 (99 %), 1 lacuna (0 %)). A sequência de ITS foi idêntica à de "Petriella sp. Vega423" (GenBank EU002908.1, 565/565) isolado como endófito de raiz de Coffea arabica na Colômbia. As sequências de ITS do CPC 32460 e 32461 são idênticas. Os resultados mais próximos utilizando a sequência de LSU do CPC 32460 são Petriella setifera (GenBank MH872684.1; Identidades = 794/794 (100 %)), Petriella sordida (GenBank MH875102.1; Identidades = 793/794 (99 %), sem lacunas) e Petriella asymmetrica var. cypria (GenBank MH867451.1; Identidades = 793/794 (99 %), sem lacunas). As sequências de LSU do CPC 32460 e 32461 são idênticas. A sequência cmdA do CPC 32460 foi idêntica à de Petriella sordida (cepa UTHSC 03-394, GenBank AM409103.1; Identidades = 449/449 (100 %)). Os resultados mais próximos utilizando a sequência rpb2 do CPC 32461 apresentaram maior similaridade com Petriella setifera (GenBank DQ368640.1; Identidades = 701/702 (99 %), sem lacunas), Scedosporium boydii (GenBank KP981186.1; Identidades = 510/600 (85 %), sem lacunas) e Pseudallescheria fusoidea (GenBank KP981195.1; Identidades = 509/600 (85 %), sem lacunas). Nenhuma sequência de tef1 de Petriella que cubra a mesma região amplificada aqui está disponível para comparação no GenBank; resultados distantes incluem Scedosporium aurantiacum (GenBank KJ784086.1; Identidades = 278/334 (83 %), 8 lacunas (2 %)), Scopulariopsis brevicaulis (GenBank KP009002.1; Identidades = 148/159 (93 %), sem lacunas) e Thyronectria rhodochlora (GenBank KM225694.1; Identidades = 144/154 (94 %), sem lacunas). As sequências tef1 do CPC 32460 e 32461 são idênticas. A sequência tub2 do CPC 32460 foi idêntica tanto a Petriella setifera (GenBank EU977491.1; Identidades = 488/488 (100 %)) quanto a Petriella sordida (GenBank AM409104.1; Identidades = 399/399 (100 %)).
Pezicula eucalyptigena Crous, sp. nov. MycoBank MB829331. Fig. 40.
Etimologia: O nome se refere ao gênero hospedeiro Eucalyptus do qual foi isolado.
In vitro. Conidiomatos esporodoquiais, formando-se superficialmente no ágar, dispersos, marrom-escuros, 100–250 µm de diâmetro, exsudando uma massa conidial cremosa. Macroconidióforos hialinos, lisos, subcilíndricos, ramificados, 1–4-septados, 40–90 × 3–4 µm. Células macroconidiogênicas integradas, terminais e intercalares, subcilíndricas, hialinas, lisas, fialídicas com proliferações percorrentes indistintas, 10–25 × 3,5–4 µm. Macroconídios asseptados, hialinos, lisos, gutulados, elipsoide-clavados, retos a levemente curvos, com hilo truncado proeminentemente protuberante, 2 µm de diâmetro, (23–)24–27(–30) × (6–)7(–8) µm. Microconidióforos hialinos, lisos, subcilíndricos, ramificados, 6–12-septados, 60–130 × 2,5–3,5 µm. Células microconidiogênicas integradas, terminais e intercalares, subcilíndricas, hialinas, lisas, fialídicas, 10–20 × 2,5–3 µm. Microconídios hialinos, lisos, asseptados, subcilíndricos, ápice obtuso, base truncada, retos a irregularmente curvos, (7–)10–12(–15) × 2(–2,5) µm.
Características de cultura: Colônias espalhadas com micélio aéreo moderado, cobrindo a placa em 2 semanas. Em MEA, superfície mel a avelã, reverso avelã; em PDA, superfície camurça, reverso isabelino; em OA, superfície mel.
Tipo: África do Sul, Província do Cabo Ocidental, Malmesbury, em folhas de Eucalyptus sp. (Myrtaceae), 2006, P.W. Crous (holótipo CBS H-23799, cultura ex-tipo CBS 144637 = CPC 32129).
Notas: O complexo genérico Pezicula foi recentemente revisado por Chen et al. (2016). Espécies deste complexo conhecidas por ocorrer em Eucalyptus incluem Parafabraea caliginosa, Parafabraea eucalypti e Pezicula californiae (de folhas de Eucalyptus na Califórnia, EUA). Pezicula eucalyptigena é filogeneticamente próxima de P. californiae (conídios 12,5–27,5 × 4,2–5,8 µm), mas morfologicamente distinta por apresentar conídios maiores.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos do GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Pezicula cinnamomea (GenBank KR859109.1; Identidades = 498/524 (95%), 5 lacunas (0%)), Pezicula sporulosa (GenBank JN693514.1; Identidades = 495/519 (95%), 4 lacunas (0%)) e Pezicula californiae (GenBank JX144747.1; Identidades = 495/519 (95%), 4 lacunas (0%)). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Pezicula brunnea (GenBank KR858894.1; Identidades = 842/848 (99%), sem lacunas), Pezicula ericae (GenBank MH874637.1; Identidades = 876/883 (99%), sem lacunas) e Pezicula melanigena (GenBank KR859003.1; Identidades = 838/845 (99%), sem lacunas). As correspondências mais próximas usando a sequência rpb2 tiveram maior similaridade com Pezicula eucrita (GenBank KF376205.1; Identidades = 866/915 (95%), sem lacunas), Pezicula neoheterochroma (GenBank KR859338.1; Identidades = 850/899 (95%), sem lacunas) e Pezicula aff. cinnamomea (GenBank KF376209.1; Identidades = 864/915 (94%), sem lacunas).
Phaeoseptoriella Crous, gen. nov. MycoBank MB829332.
Etimologia: O nome refere-se à sua similaridade morfológica com espécies pequenas de Phaeoseptoria.
Associado a manchas foliares. Conidiomatas solitários, globosos, marrons com ostíolo central. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas revestindo a cavidade interna. Células conidiogênicas ampuliformes a doliiformes, marrom-claras, lisas, proliferando percurrentemente no ápice. Conídios solitários, marrom-claros, finamente rugosos, retos a levemente curvos, fusoides-elipsoides, septados, ápice subobtuso, base truncada.
Espécie-tipo: Phaeoseptoriella zeae Crous.
Phaeoseptoriella zeae Crous, sp. nov. MycoBank MB829333. Fig. 41.
Etimologia: O nome se refere ao hospedeiro Zea mays do qual foi isolado.
Associado a manchas foliares pequenas, subcirculares, marrom-claras, anfígenas, com 2–6 mm de diâmetro. Conidiomatas solitários, globosos, 200–250 µm de diâmetro, marrons com ostíolo central. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas revestindo a cavidade interna. Células conidiogênicas ampuliformes a doliiformes, marrom-claras, lisas, proliferando percurrentemente no ápice, 4–6 × 4–6 µm. Conídios solitários, marrom-claros, finamente rugosos, retos a levemente curvos, fusoides-elipsoides, ápice subobtuso, base truncada, 1,5–2 µm de diâmetro, (1–)3-septados, (14–)17–20(–23) × (3–)4 µm.
Características de cultivo: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, cobrindo a placa após 2 semanas a 25 °C. Em MEA superfície branco sujo, reverso canela; em PDA superfície branco sujo, reverso rosado-claro; em OA superfície rosado-vináceo.
Typus: África do Sul, Província de Gauteng, Gauteng, em folhas de Zea mays (Poaceae), 12 abr. 2010, T.A. Coutinho, HPC 2038 (holótipo CBS H-23814, cultura ex-tipo CPC 33064 = CBS 144614).
Notas: A mancha foliar por Phaeosphaeria (PLS) foi anteriormente atribuída a Phaeosphaeria maydis (descrita de folhas de Zea mays em São Paulo, Brasil), que tem sido associada a vários morfos assexuados, incluindo uma Phyllosticta sp. (= morfo sexuado Guignardia), e Phoma maydis. relatou um morfo assexuado semelhante a Phoma associado a PLS como semelhante em cultura a colônias de Phaeosphaeria maydis, e postulou que várias espécies de fungos estavam envolvidas na causa da PLS. No entanto, em um estudo recente, mostrou que uma bactéria, Pantoea ananatis, era o agente causal primário da doença, e que os fungos isolados dessas lesões eram colonizadores secundários do tecido doente, afirmando também que os sintomas da doença mostrados por eram atípicos para PLS. Na África do Sul, manchas foliares subcirculares proeminentes de cor castanha foram encontradas em Z. mays associadas a um novo gênero, descrito aqui como Phaeoseptoriella zeae. Estudos adicionais são agora necessários para determinar a importância relativa deste fungo e confirmar seu papel como patógeno do milho.
Com base em uma pesquisa megablast no banco de dados GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS apresentaram maior similaridade com Parastagonospora avenae (como Phaeosphaeria avenaria, GenBank FJ605258.1; Identidades = 526/546 (96 %), 6 lacunas (1 %)), Camarosporioides phragmitis (GenBank NR_153925.1; Identidades = 425/474 (90 %), 15 lacunas (3 %)) e Coniothyrium ferrarisianum (GenBank MH860854.1; Identidades = 424/474 (89 %), 15 lacunas (3 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Didymocyrtis consimilis (GenBank MH876627.1; Identidades = 878/882 (99 %), sem lacunas), Parastagonospora nodorum (GenBank MH868570.1; Identidades = 878/882 (99 %), sem lacunas) e Kalmusia utahensis (GenBank MH876142.1; Identidades = 877/882 (99 %), sem lacunas). As correspondências mais próximas usando a sequência rpb2 apresentaram maior similaridade com Didymocyrtis banksiae (GenBank KY979850.1; Identidades = 759/902 (84 %), 2 lacunas (0 %)), Parastagonospora nodorum (como Phaeosphaeria nodorum, GenBank DQ499803.1; Identidades = 757/903 (84 %), 2 lacunas (0 %)) e Parastagonospora avenaria f. sp. tritici (como Phaeosphaeria avenaria f. sp. triticae, GenBank DQ499799.1; Identidades = 757/905 (84 %), 6 lacunas (0 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência tef1 apresentaram maior similaridade com Sclerostagonospora ericae (GenBank KX228375.1; Identidades = 417/515 (81 %), 28 lacunas (5 %)), Didymocyrtis cladoniicola (como Diederichomyces cladoniicola, GenBank KP170668.1; Identidades = 409/516 (79 %), 10 lacunas (1 %)) e Septoria oudemansii (GenBank KF253436.1; Identidades = 333/409 (81 %), 8 lacunas (1 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência tub2 apresentaram maior similaridade com Sclerostagonospora ericae (GenBank KX228383.1; Identidades = 263/287 (92 %), 4 lacunas (1 %)), Diederichomyces ficuzzae (GenBank KP170697.1; Identidades = 262/290 (90 %), 6 lacunas (2 %)) e Didymocyrtis foliaceiphila (como Diederichomyces foliaceiphila, GenBank KP170698.1; Identidades = 260/288 (90 %), 3 lacunas (1 %)).
Phlogicylindrium dunnii Crous, sp. nov. MycoBank MB829334. Fig. 42.
Etimologia: O nome refere-se a Eucalyptus dunnii do qual foi isolado.
Conidiomas eustromáticos, multiloculares, lóculos com 100–200 µm de diâmetro, ocorrendo solitários em folhas, mas em aglomerados em ágar, exsudando uma massa conidial viscosa de cor rosa. Conidióforos originando-se de um estroma marrom de 3–6 camadas de textura angularis, subcilíndricos, ramificados, 1–3-septados, marrons, lisos, 30–70 × 3–4 µm. Células conidiogênicas marrom-claras, lisas, subcilíndricas, 15–30 × 2,5–3 µm, proliferando simpodialmente e percurrentemente próximo ao ápice. Macroconídios hialinos, lisos, estreitamente fusoides a mais largos no meio com ligeiro afunilamento em direção às extremidades, subcilíndricos, 1-septados, ápice subobtuso, base truncada, curvos, (32–)35–42(–47) × (2–)2,5(–3) µm. Microconídios hialinos, lisos, asseptados, cilíndricos, curvos, ápice obtuso, base truncada, 15–18 × 1,5 µm, formando-se no mesmo conidioma que os macroconídios.
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado e superfície dobrada e margem lisa, lobada, atingindo 10 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA superfície ocre, reverso umbra; em PDA superfície ocre, reverso salmão a ocre; em OA superfície cinza fumê.
Typus: Austrália, Nova Gales do Sul, Floresta Estadual de Tooloom, em folhas de Eucalyptus dunnii (Myrtaceae), 20 jan. 2016, A.J. Carnegie, HPC 1447 (holótipo CBS H-23264, cultura ex-type CPC 31818 = CBS 144620).
Notas: Phlogicylindrium foi estabelecido por para acomodar um gênero com tufos conidiomatais eretos, em forma de chama, a conidiomata esporodoquiais, e conídios cilíndricos, hialinos formando-se em células conidiogênicas marrons, proliferando percurrentemente. Phlogicylindrium dunnii é bastante atípico pelo fato de possuir conidiomata eustromáticos, multiloculares, que com a idade parecem esporodoquiais à medida que envelhecem.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Phlogicylindrium tereticornis (GenBank NR_156660.1; Identidades = 550/566 (97 %), 3 gaps (0 %)), Phlogicylindrium eucalyptorum (GenBank EU040223.1; Identidades = 411/432 (95 %), 3 gaps (0 %)), e Phlogicylindrium mokarei (GenBank KY173431.1; Identidades = 409/432 (95 %), 3 gaps (0 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Phlogicylindrium tereticornis (GenBank NG_058510.1; Identidades = 788/789 (99 %), sem gaps), Phlogicylindrium mokarei (GenBank NG_059750.1; Identidades = 782/789 (99 %), sem gaps), e Phlogicylindrium uniforme (GenBank JQ044445.1; Identidades = 780/789 (99 %), sem gaps). A melhor correspondência usando a sequência rpb2 foi com Phlogicylindrium tereticornis (GenBank MG386142.1; Identidades = 861/871 (99 %), sem gaps). A melhor correspondência usando a sequência tef1 foi com Phlogicylindrium tereticornis (GenBank MG386151.1; Identidades = 396/402 (99 %), sem gaps).
Phyllosticta austroafricana Crous, sp. nov. MycoBank MB829336. Fig. 43.
Etimologia: O nome refere-se ao continente África onde foi coletado.
Associada a manchas foliares em serapilheira de folhas de hospedeiro arbóreo decíduo não identificado. Conidiomata picnidial, solitário, preto, erumpente, globoso, exsudando massas de conídios hialinos; picnídios de até 200 µm de diâmetro; parede de várias camadas de textura angular marrom. Ostíolo central, de até 20 µm de diâmetro. Conidióforos subcilíndricos, com 1–2 células de suporte, às vezes ramificados na base, 20–30 × 3–5 µm. Células conidiogênicas terminais, subcilíndricas, hialinas, lisas, revestidas por uma camada mucoide, 10–15 × 3–4 µm, proliferando várias vezes percurrentemente perto do ápice. Conídios (11–)14–17(–23) × (6–)8–10(–11) µm, solitários, hialinos, asseptados, de parede fina e lisa, grosseiramente gutulados, elipsoides a obovoides, afinando em direção a uma base truncada, 2–3 µm de diâmetro, envolvidos por uma bainha mucoide, 2–3 µm de espessura, e portando um apêndice mucoide apical hialino, (5–) 7–8(–10) × 1,5(–2) µm, afinando em direção a uma ponta agudamente arredondada. Espérmatias baciliformes, hialinas, lisas, gutuladas, 6–8 × 2–3 µm.
Características de cultura: Colônias erumpentes, espalhadas, com micélio aéreo esparso e superfície irregular e margem lobada, atingindo 5 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, BDA e OA, superfície cinza-ferro e reverso cinza-ferro, com pigmento amarelo difuso em OA.
Tipo: África do Sul, Província do Cabo Ocidental, em manchas foliares de hospedeiro arbóreo decíduo não identificado, 2010, P.W. Crous (holótipo CBS H-23797, cultura ex-tipo CPC 31920 = CBS 144593).
Notas: Phyllosticta inclui vários fitopatógenos importantes que causam doenças de manchas foliares e em frutos. Espécies importantes são P. ampelicida causando podridão negra em videiras, espécies do complexo P. musarum causando sarna da bananeira e P. citricarpa causando mancha preta dos citros. Phyllosticta austroafricana é uma espécie filogeneticamente distinta, associada a manchas foliares em um hospedeiro arbóreo não identificado.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Phyllosticta pseudotsugae (GenBank KF154277.1; Identidades = 539/573 (94 %), 5 lacunas (0 %)), Phyllosticta carissicola (GenBank NR_147363.1; Identidades = 574/613 (94 %), 4 lacunas (0 %)) e Phyllosticta podocarpi (GenBank KF154276.1; Identidades = 535/572 (94 %), 3 lacunas (0 %)). Correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Phyllosticta carissicola (GenBank KT950863.1; Identidades = 848/851 (99 %), sem lacunas), Phyllosticta podocarpi (GenBank KF766383.1; Identidades = 835/840 (99 %), sem lacunas) e Phyllosticta hymenocallidicola (GenBank NG_057947.1; Identidades = 869/882 (99 %), sem lacunas). Correspondências mais próximas usando a sequência actA tiveram maior similaridade com Phyllosticta acaciigena (GenBank KY173570.1; Identidades = 517/562 (92 %), 5 lacunas (0 %)), Exserohilum khartoumense (como Setosphaeria khartoumensis, GenBank LT837600.1; Identidades = 474/526 (90 %), 11 lacunas (2 %)), Exserohilum rostratum (como Setosphaeria rostrata, GenBank LT837683.1; Identidades = 473/526 (90 %), 11 lacunas (2 %)) e Exserohilum prolatum (GenBank LT837660.1; Identidades = 473/526 (90 %), 11 lacunas (2 %)). Correspondências mais próximas usando a sequência tef1 tiveram maior similaridade com Phyllosticta ericarum (GenBank KR025452.1; Identidades = 303/331 (92 %), 5 lacunas (1 %)), Phyllosticta carissicola (GenBank KT950879.1; Identidades = 367/403 (91 %), 19 lacunas (4 %)) e Phyllosticta catimbauensis (GenBank MF466155.1; Identidades = 299/331 (90 %), 4 lacunas (1 %)).
Phyllosticta hagahagaensis Crous & M.J. Wingf., sp. nov. MycoBank MB829335. Fig. 44.
Etimologia: O nome reflete Haga Haga na Província do Cabo Oriental da África do Sul, onde foi coletada.
Conidiomas picnidiais, solitários, pretos, eruptantes, globosos, exsudando massas conidiais hialinas; picnídios 250–350 µm de diâm; parede com várias camadas de textura angular marrom. Ostíolo central, até 20 µm de diâm. Conidióforos subcilíndricos, não ramificados ou ramificados abaixo, 0–2-septados, 15–30 × 4–5 µm. Células conidiogênicas terminais e intercalares, subcilíndricas, hialinas, lisas, revestidas por uma camada mucoide, 7–16 × 3,5–4 µm, proliferando várias vezes percurrentemente próximo ao ápice. Conídios (11–)13–14(–15) × (7–) 8(–9) µm, solitários, hialinos, asseptados, de parede fina e lisa, gutulados, granulares, elipsoides a obovoides, afilando-se em direção a uma base truncada, 3–3,5 µm de diâm, envoltos em uma bainha mucoide, 2,5–5 µm de espessura, e portando um apêndice mucoide apical hialino, 5–15 × 1,5–2 µm, afinando-se em direção a uma ponta agudamente arredondada.
Características de cultivo: Colônias eruptantes, espalhadas, com micélio aéreo esparso a moderado e superfície e margem irregulares, atingindo 18 mm de diâm após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, superfície cinza fumo a cinza oliváceo, reverso cinza oliváceo; em PDA, superfície e reverso cinza oliváceo; em OA, superfície cinza oliváceo a cinza fumo.
Tipo: África do Sul, Província do Cabo Oriental, Haga Haga, em serapilheira de Carissa bispinosa (Apocynaceae), 23 dez. 2010, M.J. Wingfield, HPC 1545 (holótipo CBS H-23811, cultura ex-tipo CPC 32799 = CBS 144592).
Notas: Phyllosticta carissicola [conídios (11–)12–14(–15) × (9–) 10(–11) µm, bainha 2–3 µm de espessura, apêndice mucoide apical, (10–)12–17(–25) × 1,5(–2) µm] foi descrita de folhas de Carissa macrocarpa (CPC 25665) na África do Sul por. Phyllosticta hagahagaensis difere morfologicamente de P. carissicola por apresentar conídios mais largos, bainha mucoide mais larga e apêndices mais curtos.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS apresentaram maior similaridade com Phyllosticta podocarpi (GenBank KF766217.1; Identidades = 591/603 (98 %), 1 lacuna (0 %)), Phyllosticta pseudotsugae (GenBank KF154277.1; Identidades = 559/572 (98 %), 1 lacuna (0 %)) e Phyllosticta owaniana (GenBank JF261462.1; Identidades = 569/588 (97 %), sem lacunas). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Phyllosticta carissicola (GenBank KT950863.1; Identidades = 855/856 (99 %), sem lacunas), Phyllosticta podocarpi (GenBank KF766383.1; Identidades = 837/840 (99 %), sem lacunas) e Phyllosticta hymenocallidicola (GenBank NG_057947.1; Identidades = 876/887 (99 %), sem lacunas). As correspondências mais próximas usando a sequência actA apresentaram maior similaridade com Phyllosticta acaciigena (GenBank KY173570.1; Identidades = 521/560 (93 %), 1 lacuna (0 %)), Phyllosticta carissicola (GenBank KT950872.1; Identidades = 233/243 (96 %), sem lacunas), Cladosporium velox (GenBank KT600654.1; Identidades = 459/510 (90 %), 3 lacunas (0 %)) e Alternaria frumenti (GenBank JQ671649.1; Identidades = 467/523 (89 %), 9 lacunas (1 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência gapdh apresentaram maior similaridade com Phyllosticta owaniana (GenBank JF343766.1; Identidades = 299/300 (99 %), sem lacunas), Phyllosticta podocarpi (GenBank KF289168.1; Identidades = 298/300 (99 %), sem lacunas) e Phyllosticta carissicola (GenBank KT950876.1; Identidades = 501/510 (98 %), 1 lacuna (0 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência tef1 apresentaram maior similaridade com Phyllosticta carissicola (GenBank KT950879.1; Identidades = 379/389 (97 %), 2 lacunas (0 %)), Phyllosticta hakeicola (GenBank MH108025.1; Identidades = 328/353 (93 %), 10 lacunas (2 %)) e Phyllosticta yuccae (GenBank JX227948.1; Identidades = 355/398 (89 %), 14 lacunas (3 %)).
Piniphoma Crous & R.K. Schumach., gen. nov. MycoBank MB829337.
Etimologia: Nome combinado do nome do gênero hospedeiro Pinus e do gênero fúngico Phoma.
Conidiomas solitários, picnidiais, globosos com ostíolo central, pardo-claros, exsudando uma massa conidial cremosa. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas revestindo a cavidade interna, ampuliformes, hialinos, lisos, fialídicos. Conídios solitários, asseptados, lisos, hialinos, retos, gutulados, subcilíndricos com extremidades obtusas.
Espécie-tipo: Piniphoma wesendahlina Crous & R.K. Schumach.
Piniphoma wesendahlina Crous & R.K. Schumach., sp. nov. MycoBank MB829338. Fig. 45.
Etimologia: Nome refere-se à cidade de Berlim, onde foi coletado.
Conidiomas solitários, picnidiais, 80–120 µm de diâmetro, globosos com ostíolo central, pardo-claros, observados apenas em PNA, exsudando uma massa conidial cremosa. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas revestindo a cavidade interna, ampuliformes, hialinos, lisos, fialídicos, 4–5 × 3–4 µm. Conídios solitários, asseptados, lisos, hialinos, retos, gutulados, subcilíndricos com extremidades obtusas, (3–)4(–5) × 2 µm.
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, atingindo 45 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, PDA e OA, superfície e reverso cinza-oliváceo.
Tipo: Alemanha, Berlim, detritos de madeira de Pinus sylvestris (Pinaceae), 1 de maio de 2017, H. Schreiber & R.K. Schumacher, HPC 2114 = RKS 106 (holótipo CBS H-23823, cultura ex-tipo CPC 33693 = CBS 145032).
Notas: Piniphoma wesendahlina é um gênero semelhante a Phoma que ocorre em detritos de madeira de Pinus sylvestris coletados em Berlim, Alemanha. Filogeneticamente, parece distinto de outros gêneros semelhantes a Phoma atualmente conhecidos e, portanto, é introduzido como novo.
Com base em uma busca Megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência de ITS tiveram maior similaridade com Setophoma vernoniae (GenBank KJ869141.1; Identidades = 445/486 (92 %), 8 lacunas (1 %)) e Shiraia bambusicola (GenBank MF062656.1; Identidades = 451/491 (92 %), 11 lacunas (2 %)). Foi idêntica a várias sequências não identificadas, por exemplo, GenBank GU566235.1 da rizosfera de Phalaris arundinacea na República Tcheca, GenBank FN394707.1 de um fungo endofítico de Holcus lanatus na Espanha e GenBank MH063650.1 de raízes assintomáticas e esterilizadas superficialmente de Arrhenatherum elatius na França. As correspondências mais próximas usando a sequência de LSU são Coniothyrium quercinum (GenBank MH877842.1; Identidades = 858/860 (99 %), sem lacunas), Sclerostagonospora cycadis (GenBank MH874827.1; Identidades = 858/860 (99 %), sem lacunas) e Coniothyrium ferrarisianum (GenBank MH872593.1; Identidades = 858/860 (99 %), sem lacunas). Correspondências distantes usando a sequência de rpb2 tiveram maior similaridade com Exserohilum fusiforme (GenBank LT852483.1; Identidades = 732/899 (81 %), 22 lacunas (2 %)), Exserohilum oryzicola (GenBank LT715748.1; Identidades = 717/883 (81 %), 19 lacunas (2 %)) e Bipolaris maydis (GenBank XM_014222497.1; Identidades = 740/918 (81 %), 17 lacunas (1 %)). Correspondências muito distantes usando a sequência de tef1 tiveram maior similaridade com Dendryphion penicillatum (GenBank AY375376.1; Identidades = 207/234 (88 %), 4 lacunas (1 %)), Libertasomyces quercus (GenBank KY929197.1; Identidades = 208/235 (89 %), 8 lacunas (3 %)) e Alternaria alternariae (como Ulocladium alternariae, GenBank AY375370.1; Identidades = 207/234 (88 %), 6 lacunas (2 %)). Correspondências distantes usando a sequência de tub2 tiveram maior similaridade com Sclerostagonospora ericae (GenBank KX228383.1; Identidades = 467/551 (85 %), 26 lacunas (4 %)), Parastagonospora avenae f. sp. avenae (como Phaeosphaeria avenaria f. sp. avenaria, GenBank AY870404.1; Identidades = 468/557 (84 %), 31 lacunas (5 %)) e Seltsamia ulmi (GenBank MF795918.1; Identidades = 409/487 (84 %), 17 lacunas (3 %)).
Pseudocercospora hakeae (U. Braun & Crous) U. Braun & Crous, Stud. Mycol. 75: 88. 2012 (2013). Fig. 46.
Basônimo: Cercostigmina protearum var. hakeae U. Braun & Crous, Sydowia 46: 206. 1994.
Manchas foliares anfígenas, alongadas, confinadas pelas nervuras foliares, 2–3 mm de diâmetro, marrom médio com borda elevada, marrom-escura. Caespítulos verde-oliváceos, anfígenos, desenvolvendo-se em um estroma marrom bem definido de até 250 µm de diâmetro. Conidióforos densamente agregados, subcilíndricos, ramificados ou não, geniculados-sinuosos, 3–7-septados, marrom médio, de parede espessa, finamente verruculosos, 30–70 × 6–8 µm. Células conidiogênicas subcilíndricas, marrom médio, finamente verruculosas, de parede espessa, terminais e intercalares, proliferando percurentemente e/ou simpodialmente, 12–20 × 5–7 µm; loci truncados, não espessados, não escurecidos, 2–3 µm de diâmetro. Conídios solitários, subcilíndricos, marrom médio, finamente verruculosos, ápice obtuso, base truncada, 2(–2.5) µm de diâmetro, retos a geniculados-sinuosos, (1–)3–6(–7)-septados, (15–)30–50(–65) × 4(–5) µm.
Características de cultura: Colônias erumpentes, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, atingindo 7 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, PDA e OA superfície cinza-olivácea, e reverso cinza-ferro.
Material examinado: Austrália, Nova Gales do Sul, Fitzroy Falls, Parque Nacional Morton, em folhas de Hakea sp. (Proteaceae), 26 de nov. de 2016, P.W. Crous, HPC 1756 = CBS H-23798, cultura CPC 32100 = CBS 144520).
Notas: Pseudocercospora hakeae (como Cercostigmina protearum var. hakeae) foi descrita a partir de folhas de Hakea saligna coletadas na Província de Limpopo, África do Sul. A cultura vinculada a esta espécie (CBS 112226), foi, no entanto, coletada em Grevillea sp. na Austrália. A presente coleta forneceu a primeira cultura de Hakea sp., também coletada na Austrália.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Pseudocercospora fuligena (GenBank GU214675.1; Identidades = 533/535 (99 %), 1 lacuna (0 %)), Pseudocercospora chengtuensis (GenBank GU214672.1; Identidades = 533/535 (99 %), 1 lacuna (0 %)) e Pseudocercospora atromarginalis (GenBank GU214671.1; Identidades = 533/535 (99 %), 1 lacuna (0 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Pseudocercospora cydoniae (GenBank MH877505.1; Identidades = 852/852 (100 %), sem lacunas), Pseudocercospora rhamnellae (GenBank MH877382.1; Identidades = 852/852 (100 %), sem lacunas) e Pseudocercospora ranjita (GenBank MH875340.1; Identidades = 852/852 (100 %), sem lacunas). As correspondências mais próximas usando a sequência actA tiveram maior similaridade com Pseudocercospora hakeae (GenBank JQ325017.1; Identidades = 587/588 (99 %), sem lacunas), Pseudocercospora cruenta (GenBank JQ325012.1; Identidades = 574/590 (97 %), 2 lacunas (0 %)) e Pseudocercospora neriicola (GenBank KJ869231.1; Identidades = 573/589 (97 %), sem lacunas). As correspondências mais próximas usando a sequência rpb2 tiveram maior similaridade com Pseudocercospora prunicola (GenBank MF951621.1; Identidades = 851/893 (95 %), sem lacunas), Pseudocercospora nymphaeacea (GenBank LC199939.1; Identidades = 813/860 (95 %), sem lacunas) e Pseudocercospora flavomarginata (GenBank MF951619.1; Identidades = 841/893 (94 %), sem lacunas). As correspondências mais próximas usando a sequência tef1 tiveram maior similaridade com Pseudocercospora hakeae (GenBank GU384495.1; Identidades = 314/315 (99 %), sem lacunas), Pseudocercospora basiramifera (GenBank DQ211677.2; Identidades = 458/510 (90 %), 9 lacunas (1 %)) e Pseudocercospora pallida (GenBank GU384469.1; Identidades = 280/315 (89 %), 3 lacunas (0 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência tub2 tiveram maior similaridade com Pseudocercospora atromarginalis (GenBank KM452894.1; Identidades = 226/235 (96 %), sem lacunas), Pseudocercospora pyracanthigena (GenBank JX902271.1; Identidades = 225/235 (96 %), sem lacunas) e Pseudocercospora tereticornis (GenBank JX902280.1; Identidades = 224/235 (95 %), sem lacunas).
Pseudoconiothyrium Crous & R.K. Schumach., gên. nov. MycoBank MB829339.
Etimologia: O nome refere-se à sua similaridade morfológica com o gênero Coniothyrium, do qual é filogeneticamente distinto.
Conidiomas eustromáticos, picnidiais, agregados, globosos com abertura central; parede de 6–10 camadas de textura angular marrom. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas revestindo a cavidade interna, hialinas, lisas, doliiformes a ampuliformes, fialídicas com espessamento periclinal e, às vezes, com proliferação percurrente. Conídios solitários, asseptados, subcilíndricos a elipsoides a subglobosos, ápice obtuso, base truncada a arredondada romba, marrom médio, verruculosos.
Espécie-tipo: Pseudoconiothyrium broussonetiae Crous & R.K. Schumach.
Pseudoconiothyrium broussonetiae Crous & R.K. Schumach., esp. nov. MycoBank MB829340. Fig. 47.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero hospedeiro Broussonetia do qual foi isolado.
Conidiomata eustromática, picnidial, agregada, 250–400 µm de diâmetro, globosa com abertura central; parede com 6–10 camadas de textura angular marrom. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas revestindo a cavidade interna, hialinas, lisas, doliiformes a ampuliformes, fiálides com espessamento periclinal e, às vezes, com proliferação percurrente, 5–10 × 4–6 µm. Conídios solitários, asseptados, subcilíndricos a elipsoides a subglobosos, ápice obtuso, base truncada a arredondada, marrom médio, verruculosos, (5–) 6–7(–8) × (4,5–)5(–6) µm.
Características de cultura: Colônias espalhadas, com superfície dobrada, micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, atingindo 30 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, superfície branco-sujo a ocre, reverso ocre; em PDA, superfície amarelo-pálido a ocre, reverso ocre; em OA, superfície ocre com pigmento ocre difuso.
Tipo: Itália, Florença, Plaza della indipendenza, ramo de Broussonetia papyrifera (Moraceae), 16 fev. 2017, G. Bonari & R.K. Schumacher, HPC 2009 = RKS 68 (holótipo CBS H-23822, cultura ex-tipo CPC 33570 = CBS 145036).
Notas: Pseudoconiothyrium é aparentado a Paraconiothyrium na árvore filogenética, mas é filogeneticamente distinto deste último gênero. Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Pseudocoleophoma typhicola (GenBank NR_154350.1; Identidades = 508/563 (90 %), 13 lacunas (2 %)), Coniothyrium crepinianum (GenBank MH860873.1; Identidades = 507/574 (88 %), 25 lacunas (4 %)) e Pseudocoleophoma polygonicola (GenBank NR_154274.1; Identidades = 429/470 (91 %), 11 lacunas (2 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Aquadictyospora lignicola (como Pleosporales sp. ZLL-2017a, GenBank MF948629.1; Identidades = 774/789 (98 %), 1 lacuna (0 %)), Dictyosporium tratense (como Dictyocheirospora sp. YJ2018b, GenBank MH381776.1; Identidades = 814/831 (98 %), 4 lacunas (0 %)) e Cheiromyces inflatus (GenBank JQ267363.1; Identidades = 802/819 (98 %), 1 lacuna (0 %)). Correspondências muito distantes usando a sequência tef1 tiveram maior similaridade com Xenophoma puncteliae (GenBank KP170686.1; Identidades = 265/321 (83 %), 18 lacunas (5 %)) e Pseudochaetosphaeronema ginkgonis (como Pseudochaetosphaeronema sp. XYD-2016a, GenBank KU365984.1; Identidades = 278/345 (81 %), 18 lacunas (5 %)).
Pseudophaeophleospora phormii (Naito) Crous, comb. nov. MycoBank MB829341. Fig. 48.
Basônimo: Hendersonia phormii Naito, Science Rep. Kagoshima Univ. 1: 77. 1952.
Sinônimos: Kirramyces phormii (Naito) M.E. Palm, Mycol. Res. 100: 374. 1996.
Phaeophleospora phormii (Naito) Crous et al., S. Afr. J. Bot. 63: 115. 1997.
Manchas foliares marrons, elípticas a alongadas, circundadas por uma borda vermelho-púrpura escura. Conidiomas picnidiais, imersos, solitários, globosos a subglobosos, com até 200 µm de diâmetro; parede com 3–6 camadas de textura angular marrom. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas revestindo a cavidade interna. Células conidiogênicas cilíndricas a lageniformes, marrom médio, finamente rugosas, 10–15 × 4–5 µm, proliferando percurrentemente próximo ao ápice. Conídios solitários, marrom médio, verruculosos, agregando-se em massa mucoide, cilíndricos, ápice obtuso, base truncada, 2–3 µm de diâmetro, com franja marginal, 3(–6)-septados, (30–)38–55(–60) × (3–)3,5(–4) µm.
Características de cultura: Colônias erumpentes, espalhadas, com micélio aéreo moderado, superfície dobrada e margem lisa, lobada, atingindo 7 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, superfície cinza-olivácea, reverso cinza-oliváceo; em PDA, superfície branco-sujo, reverso cinza-oliváceo; em OA, superfície branco-sujo com pigmento vermelho difuso.
Tipo: Nova Zelândia, Levin, Earl St, em Phormium tenax, 12 dez. 1971, G. Laudon, PDD 39822 (neótipo designado por Palm 1996); Auckland, Grey Lynn Park, em Phormium tenax (Asphodelaceae), 5 out. 2016, R. Thangavel T16_03297D (epítipo designado aqui CBS H-23264, MBT385290, cultura ex-epítipo CPC 32742 = CBS 144606).
Notas: Pseudophaeophleospora foi estabelecido por Videira et al. (2017) para acomodar um gênero semelhante a Phaeophleospora ocorrente em Eucalyptus. Os dois gêneros são morfologicamente semelhantes e melhor distinguidos com base em suas sequências de DNA.
A presente coleção corresponde de perto à morfologia do neótipo de Hendersonia phormii, descrito por. Infelizmente, a cultura utilizada no último artigo não é mais viável e, portanto, não pôde ser depositada. A cultura da presente coleção é, assim, designada aqui como epítipo, para fixar a aplicação filogenética do nome.
Com base em uma pesquisa megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência de ITS apresentaram maior similaridade com Pseudophaeophleospora atkinsonii (como Phaeophleospora atkinsonii, GenBank GU214643.1; Identities = 480/505 (95 %), sem gaps), Pallidocercospora acaciigena (GenBank MH862893.1; Identities = 478/520 (92 %), 5 gaps (0 %)), e Pallidocercospora heimii (como Mycosphaerella heimii, GenBank GQ852745.1; Identities = 479/521 (92 %), 7 gaps (1 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência de LSU são Pseudophaeophleospora atkinsonii (como Phaeophleospora atkinsonii, GenBank GU214463.1; Identities = 839/849 (99 %), sem gaps), Pallidocercospora irregulariramosa (GenBank GU214441.1; Identities = 878/892 (98 %), 1 gap (0 %)), e Pallidocercospora holualoana (como Mycosphaerella holualoana, GenBank JF770467.1; Identities = 877/892 (98 %), 1 gap (0 %)). Nenhuma sequência de actA de Pseudophaeophleospora está disponível para comparação no GenBank; correspondências distantes incluem Pseudocercospora udagawana (GenBank GU320527.1; Identities = 544/604 (90 %), 12 gaps (1 %)), Parapallidocercospora thailandica (como Pallidocercospora thailandica, GenBank EU514333.1; Identities = 496/535 (93 %), 7 gaps (1 %)), e Pallidocercospora heimii (GenBank KF903399.1; Identities = 487/525 (93 %), 6 gaps (1 %)). Nenhuma sequência de tef1 de Pseudophaeophleospora está disponível para comparação no GenBank; correspondências distantes incluem Pallidocercospora crystallina (GenBank MF135483.1; Identities = 376/463 (81 %), 27 gaps (5 %)), Parapallidocercospora thailandica (como Mycosphaerella thailandica, GenBank AY840477.2; Identities = 329/399 (82 %), 24 gaps (6 %)), e Neoceratosperma cyatheae (GenBank KT037504.1; Identities = 184/196 (94 %), sem gaps).
Pseudorobillardaceae Crous, fam. nov. MycoBank MB829342.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero Pseudorobillarda.
Conidiomata imersos, globosos, uniloculares, com ostíolo central; parede de 3–6 camadas de textura angular de paredes finas e achatadas; conidiomata dando origem a micro e macroconídios. Macroconidióforos revestindo a cavidade interna, reduzidos a células conidiogênicas, hialinas, lisas, doliiformes, falídicas com espessamento periclinal e colarinho alargado, ou proliferando percurrentemente quando mais velhos. Paráfises numerosas, semelhantes a hifas, entremeadas entre os conidióforos, asseptadas, flexuosas. Macroconídios solitários, septados, gutulados, hialinos, lisos, ápice subobtuso, afinando para uma base truncada; apêndices apicais surgindo da divisão da bainha conidial, semelhantes a cabelos, flexuosos, não ramificados, frágeis, flexuosos, não ramificados, geralmente ausentes. Células microconidiogênicas hialinas, lisas, subcilíndricas a ampuliformes, proliferando percurrentemente. Microconídios solitários, asseptados, hialinos, lisos, gutulados, subcilíndricos, ápice obtuso, base truncada; apêndices apicais semelhantes a cabelos, flexuosos, não ramificados, frágeis, flexuosos, não ramificados.
Gênero tipo: Pseudorobillarda M. Morelet (1968)
Espécie tipo: Pseudorobillarda phragmitis (Cunnell) M. Morelet.
Notas: Pseudorobillarda bolusanthi foi recentemente introduzida por ), e colocada em Pseudorobillardaceae (Dothideomycetes). A família, no entanto, não foi publicada e, portanto, é formalmente introduzida aqui.
Pseudosigmoidea alnicola Crous & R.K. Schumach., sp. nov. MycoBank MB829346. Fig. 49.
Etimologia: O nome reflete o gênero hospedeiro Alnus do qual foi isolada.
Micélio consistindo de hifas marrom-claras, lisas, com 1,5–2 µm de diâmetro, frequentemente formando espirais de hifas, dando origem a conidióforos solitários, eretos, subcilíndricos, não ramificados, marrom-claros, lisos, 0–1-septados, 10–20 × 2,5–3 µm. Células conidiogênicas integradas, terminais, marrom-claras, lisas, subcilíndricas, 5–15 × 1,5–3 µm; ápice com um a vários loci semelhantes a dentículos, 0,5–1 × 1 µm. Conídios obclavados, flexuosos, multisseptados, marrom-claros, de parede lisa, gutulados, ápice subobtuso, base obcônica truncada, mais largos no primeiro septo basal, base arredondada e romba, ligados à célula conidiogênica através de um locus excêntrico que deixa uma célula separadora cilíndrica na lateral do conídio, 1–2 × 1–1,5 µm, 80–250 × 3–4 µm, região apical do conídio com 1,5–2 µm de diâmetro.
Características de cultura: Colônias espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, atingindo 25 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, PDA e OA, superfície e reverso umbra.
Tipo: Alemanha, perto de Berlim, madeira de amieiro, serapilheira de Alnus glutinosa (Betulaceae), 3 de maio de 2017, R.K. Schumacher, HPC 2100 (holótipo CBS H-23826, cultura ex-tipo CPC 33776 = CBS 145034).
Notas: Pseudosigmoidea (baseada em P. cranei), possui conidiogênese rexolítica com uma célula separadora, e conídios longos, flexuosos, subcilíndricos a obclavados, septados, hialinos a marrom-claros, lisos. Embora o gênero seja listado como Ascomycota “incertae sedis”, este estudo mostra que ele reside em Sympoventuriaceae (Venturiales, Dothidiomycetes). Pseudosigmoidea é conhecida por duas espécies, P. cranei (conídios 26–116,5 × 1,5–2,5 µm, 3–8-septados) e P. ibarakiensis (conídios 68–133 × 4–8 µm, até 6-septados), ambas as quais podem ser facilmente distinguidas de P. alnicola com base em sua morfologia conidial.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência de ITS tiveram maior similaridade com Troposporella fumosa (GenBank DQ351724.1; Identidades = 564/585 (96 %), 1 gap (0 %)), Helicoma monilipes (GenBank DQ351723.1; Identidades = 556/587 (95 %), 4 gaps (0 %)), e Pseudosigmoidea ibarakiensis (GenBank LC146758.1; Identidades = 546/577 (95 %), 10 gaps (1 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência de LSU são Scolecobasidium excentricum (GenBank MH874174.1; Identidades = 854/856 (99 %), sem gaps), Troposporella fumosa (GenBank MH874121.1; Identidades = 850/856 (99 %), sem gaps), e Sympoventuria melaleucae (GenBank NG_058520.1; Identidades = 840/849 (99 %), sem gaps).
Pseudoteratosphaeria africana Crous, sp. nov. MycoBank MB829347. Fig. 50.
Etimologia: O nome refere-se ao continente da África onde foi coletada.
Manchas foliares anfígenas, circulares, 2–5 mm de diâmetro, marrom médio, com borda fina, escura e elevada. Ascomas pseudoteciais, predominantemente hipofilóides, pretos, imersos a erumpentes, globosos, 70–100 µm de diâmetro, com ostíolo apical; parede com 2–3 camadas de textura angular marrom. Ascos aparafisados, fasciculados, bitunicados, subsésseis, obovoides, retos a levemente curvos, 8-esporados, 30–35 × 8–11 µm. Ascósporos bi a trisseriados, sobrepostos, hialinos, gutulados, de parede fina, retos a levemente curvos, obovoides com extremidades obtusas, mais largos no meio da célula apical, medianamente 1-septados, constritos no septo, afilando-se em direção a ambas as extremidades, mas mais proeminentemente em direção à extremidade inferior, (11–)12–13(–14) × (2,5–)3–3,5(–4) µm.
Características de cultura: Colônias erumpentes, espalhadas, com micélio aéreo moderado, superfície dobrada e margem lisa, lobada, atingindo 20–30 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, BDA e OA, superfície e reverso cinza oliváceo.
Tipo: Angola, Rio Longa, mancha foliar em hospedeiro não identificado, 6 nov. 2010, J. Roux, HPC 1697 (holótipo CBS H-23816, cultura ex-tipo CPC 33144 = CBS 144595).
Materiais adicionais examinados: Angola, Rio Longa, mancha foliar em hospedeiro não identificado, 6 nov. 2010, J. Roux, culturas CPC 33145 = CBS 144596, CPC 33072 = CBS 144597.
Notas: Pseudoteratosphaeria foi introduzido para acomodar um gênero morfologicamente semelhante a Teratosphaeria, que não possuía morfos assexuados conhecidos e ocorria principalmente em Myrtaceae.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS do CPC 33072 apresentaram maior similaridade com Pseudoteratosphaeria perpendicularis (GenBank NR_155617.1; Identidades = 485/496 (98 %), 1 gap (0 %)), Pseudoteratosphaeria stramenticola (como Mycosphaerella stramenticola, GenBank DQ632669.1; Identidades = 488/500 (98 %), 2 gaps (0 %)) e Pseudoteratosphaeria gamsii (como Teratosphaeria gamsii, GenBank DQ302959.1; Identidades = 481/497 (97 %), 2 gaps (0 %)). As sequências ITS do CPC 33072, 33144 e 33145 são idênticas. As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Pseudoteratosphaeria perpendicularis (como Teratosphaeria perpendicularis, GenBank JN232443.1; Identidades = 859/861 (99 %), sem gaps), Pseudoteratosphaeria ohnowa (GenBank EU019305.2; Identidades = 866/873 (99 %), sem gaps) e Pseudoteratosphaeria flexuosa (como Teratosphaeria flexuosa, GenBank JN232432.1; Identidades = 877/885 (99 %), sem gaps). As sequências LSU do CPC 33072, 33144 e 33145 são idênticas. As correspondências mais próximas usando a sequência actA apresentaram maior similaridade com Pseudoteratosphaeria stramenticola (GenBank KF903530.1; Identidades = 515/541 (95 %), 2 gaps (0 %)), Pseudoteratosphaeria perpendicularis (GenBank KF903491.1; Identidades = 513/540 (95 %), sem gaps) e Pseudoteratosphaeria gamsii (GenBank KF903494.1; Identidades = 510/540 (94 %), sem gaps). As sequências actA do CPC 33072, 33144 e 33145 são idênticas. As correspondências mais próximas usando a sequência tef1 apresentaram maior similaridade com Pseudoteratosphaeria perpendicularis (GenBank KF903232.1; Identidades = 320/347 (92 %), 5 gaps (1 %)), Pseudoteratosphaeria stramenticola (GenBank KF903237.1; Identidades = 319/354 (90 %), 16 gaps (4 %)) e Pseudoteratosphaeria gamsii (GenBank KF903229.1; Identidades = 311/352 (88 %), 13 gaps (3 %)). As sequências tef1 do CPC 33072, 33144 e 33145 são idênticas. As correspondências mais próximas usando a sequência tub2 apresentaram maior similaridade com Pseudoteratosphaeria ohnowa (como Teratosphaeria ohnowa, GenBank KF442464.1; Identidades = 304/338 (90 %), 6 gaps (1 %)), Pseudoteratosphaeria gamsii (GenBank KF902933.1; Identidades = 221/246 (90 %), 3 gaps (1 %)) e Pseudoteratosphaeria perpendicularis (GenBank KF902936.1; Identidades = 218/247 (88 %), 5 gaps (2 %)). As sequências tub2 do CPC 33072 e 33145 são idênticas; a sequência do CPC 33144 difere em um nucleotídeo das demais.
Porodiplodia vitis Crous & R.K. Schumach., sp. nov. MycoBank MB829349. Fig. 51.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero hospedeiro Vitis do qual foi isolado.
Conidiomas eustromáticos, uni a multiloculares, marrons, globosos, 150–300 µm, agregados em ágar, ostiolados. Conidióforos revestindo a cavidade interna, subcilíndricos, hialinos, lisos, ramificados, 1–3-septados, 15–20 × 2,5–4 µm, proliferando percurrentemente próximo ao ápice. Paráfises entremeadas entre os conidióforos, hialinas, lisas, septadas, subcilíndricas com extremidades obtusas, 25–30 × 3–4 µm. Conídios em cadeias curtas (–3), fusoides-elipsoides a subcilíndricos, marrom médio, finamente verruculosos, gutulados, de parede espessa, 1-septados, ápice obtuso (às vezes com poro central), base truncada com poro central, 2 µm de diâmetro, (13–)14–16(–19) × (5–)6(–8) µm.
Características de cultura: Colônias erumpentes, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, atingindo 35 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em superfície de MEA canela a camurça, reverso siena; em superfície de PDA açafrão, reverso canela; em superfície de OA canela, com pigmento canela difuso.
Tipo: EUA, Nova York, Bronx, Van Cortlandt Park, em ramos de Vitis vinifera (Vitaceae), 2016, E. Crenson & R.K. Schumacher, HPC 1372 (holótipo CBS H-23795, cultura ex-tipo CBS 144634 = CPC 31642).
Notas: Porodiplodia foi recentemente estabelecido para um gênero que ocorre em folhas de Livistona australis na Austrália, caracterizado por ter conidiomas eustromáticos e conídios em cadeias curtas, com um poro em cada extremidade dos conídios (Crous et al. 2018c). Porodiplodia vitis difere de P. livistonae (conídios (14–)15–17(–20) × 5(–6) μm) por ter conídios mais curtos e largos.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos do GenBank do NCBI, os hits mais próximos usando a sequência de ITS tiveram maior similaridade com Porodiplodia livistonae (GenBank MH327809.1; Identidades = 533/536 (99 %), sem gaps), Chalara clidemiae (GenBank NR_145313.1; Identidades = 528/547 (97 %), 1 gap (0 %)), e Mollisia caespiticia (GenBank KY965813.1; Identidades = 506/542 (93 %), 2 gaps (0 %)). Os hits mais próximos usando a sequência de LSU são Porodiplodia livistonae (GenBank MH327845.1; Identidades = 859/859 (100 %), sem gaps), Chalara clidemiae (GenBank MH878219.1; Identidades = 765/772 (99 %), sem gaps), e Chaetochalara africana (como Chalara africana, GenBank FJ176249.1; Identidades = 834/849 (98 %), 2 gaps (0 %)). Nenhuma sequência de tef1 de Porodiplodia está disponível no GenBank para comparação; hits distantes usando a sequência de tef1 tiveram maior similaridade com Davidhawksworthia ilicicola (GenBank KU728592.1; Identidades = 205/233 (88 %), 7 gaps (3 %)), Hymenoscyphus menthae (GenBank KM114512.1; Identidades = 203/231 (88 %), 6 gaps (2 %)), e Fusarium napiforme (GenBank KM099398.1; Identidades = 201/231 (87 %), 4 gaps (1 %)).
Selenodriella fertilis (Piroz. & Hodges) R.F. Castañeda & W.B. Kendr., Univ. Waterloo Biol. Ser. 33: 34. 1990. Fig. 52.
Basônimo: Circinotrichum fertile Piroz. & Hodges, Canad. J. Bot. 51: 160. 1973.
Conidióforos dimórficos. Microconidióforos reduzidos a células conidiogênicas ou com uma célula de suporte, surgindo diretamente do micélio, hialinos, lisos, subcilíndricos, afinando em direção ao ápice denticulado, 7–12 × 2,5–3,5 µm. Macroconidióforos eretos, surgindo de hifas superficiais, flexuosos, ramificados ou não, base com célula T ou rizoides, subcilíndricos, 60–140 × 4–5 µm, 4–10-septados, ramos laterais 0–3-septados, 15–60 × 2,5–3 µm. Células conidiogênicas marrom-claras, lisas, subcilíndricas a elipsoides-fusoides alongadas, terminais e intercalares, com ráquis apical de lóculos denticulados; dentículos 1–2 × 1–1,5 µm, cicatrizes ligeiramente escurecidas, não espessadas nem refringentes, 20–30 × 2,5–3 µm. Conídios agregando-se em massas mucoides, asseptados, elipsoides-fusoides, proeminentemente curvos, ápice subobtuso, base truncada, 1 µm de diâmetro, não espessada nem escurecida, (9–)12–14(–15) × 2(–3) µm. Clamidósporos em cadeias, globosos, de parede fina, hialinos, tornando-se marrom-claros e formando microescleródios, 7–12 µm de diâmetro.
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo esparso, superfície dobrada e margem lisa e uniforme, atingindo 35 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, superfície e reverso isabelinos a amarelo-claros; em PDA, superfície e reverso cinza-oliváceos; em OA, superfície cinza-olivácea.
Material examinado: Austrália, Victoria, Nowa Nowa, em serapilheira de Eucalyptus sp. (Myrtaceae), 30 nov. 2016, P.W. Crous, HPC 1876, cultura CPC 32663 = CBS 144589.
Notas: Para notas sobre Selenodriella, ver, que confirmou a ocorrência de Selenodriella fertilis na Austrália em Hakea baxteri.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Selenodriella fertilis (GenBank MH861691.1; Identidades = 525/526 (99 %), sem gaps), Gyrothrix circinata (GenBank KJ476968.1; Identidades = 477/483 (99 %), 5 gaps (1 %)), e Selenodriella cubensis (GenBank NR_154414.1; Identidades = 515/522 (99 %), 1 gap (0 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Selenodriella fertilis (GenBank KP858992.1; Identidades = 849/851 (99 %), 1 gap (0 %)), Selenodriella cubensis (GenBank NG_058151.1; Identidades = 844/852 (99 %), 1 gap (0 %)), e Gyrothrix verticiclada (GenBank KC775726.1; Identidades = 800/821 (97 %), 6 gaps (0 %)).
Stagonospora pseudoperfecta Kaz. Tanaka & K. Hiray., Stud. Mycol. 82: 106. 2015. Fig. 53.
Conidiomas globosos, marrons, 250–300 µm de diâmetro (com pescoço papilado no tecido do hospedeiro); parede de 2–3 camadas de textura angularis marrom. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas. Células conidiogênicas revestindo a cavidade interna, hialinas, lisas, ampuliformes a subcilíndricas, 5–10 × 3–5 µm; proliferando percurrentemente. Conídios solitários, hialinos, lisos, elipsoides-fusoides, gutulados, 3-septados, ápice obtuso, afinando do septo basal ao hilo truncado, 2 µm de diâmetro, (13–)20–22(–25) × (4–)5(–6) µm.
Características de cultura: Colônias erumpentes, espalhadas, com micélio aéreo abundante e lanoso cobrindo a placa após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, PDA e OA, a superfície é cinza-fumaça e o reverso é cinza-oliváceo.
Material examinado: Alemanha, perto de Berlim, em Typha sp. (Typhaceae), 1 de abril de 2017, R.K. Schumacher, RKS 85 = HPC 2026, cultura CPC 33138 = CBS 144607.
Notas: Stagonospora pseudoperfecta foi descrita a partir de folhas mortas de Typha latifolia coletadas no Japão, e este é o primeiro registro do fungo na Europa.
Com base em uma busca megablast na base de dados de nucleotídeos do GenBank do NCBI, a sequência de ITS foi idêntica a Stagonospora pseudoperfecta (GenBank NR_155768.1; Identidades = 497/497 (100%)); e relacionada a Stagonospora trichophoricola (GenBank KY750315.1; Identidades = 533/538 (99%), 1 gap (0%)) e Stagonospora bicolor (como Saccharicola bicolor, GenBank KT367526.1; Identidades = 530/535 (99%), 1 gap (0%)). Os resultados mais próximos usando a sequência de LSU são Stagonospora pseudoperfecta (GenBank NG_059399.1; Identidades = 797/797 (100%)), Stagonospora forlicesenensis (GenBank NG_059716.1; Identidades = 794/797 (99%), sem gaps) e Stagonospora imperaticola (GenBank NG_059793.1; Identidades = 793/797 (99%), sem gaps). Nenhuma sequência de tef1 de Stagonospora pseudoperfecta está disponível para comparação no GenBank; resultados distantes incluem Helminthosporium oligosporum (GenBank KY984449.1; Identidades = 304/364 (84%), 19 gaps (5%)), Helminthosporium tiliae (GenBank KY984456.1; Identidades = 304/364 (84%), 19 gaps (5%)) e Corynespora leucadendri (GenBank KF253110.1; Identidades = 313/381 (82%), 22 gaps (5%)). Nenhuma sequência de tub2 de Stagonospora pseudoperfecta está disponível para comparação no GenBank; resultados distantes incluem Stagonospora victoriana (GenBank MG386166.1; Identidades = 331/389 (85%), 13 gaps (3%)), Stagonospora chrysopyla (GenBank KM033943.1; Identidades = 322/387 (83%), 14 gaps (3%)) e Stagonospora cf. paludosa (GenBank KF252737.1; Identidades = 245/296 (83%), 11 gaps (3%)).
Sympodiella W.B. Kendr., Trans. Br. Mycol. Soc. 41: 519. 1958. emend. Hern.-Restr. & Crous
Micélio composto por hifas septadas, ramificadas, lisas, de coloração marrom-clara a média. Morfo Sympodiella. Conidióforos solitários, eretos, marrom-médios, lisos, subcilíndricos, retos a flexuosos, não ramificados, septados, às vezes proliferando percurrentemente (em cultura). Células conidiogênicas terminais, subcilíndricas, marrom-médias, poliblásticas, simpodiais. Conídios asseptados ou septados, às vezes constritos nos septos, subcilíndricos a aciculares, ápice obtuso, base truncada, lisos, hialinos a sub-hialinos. Morfo sinassexual semelhante a Repetophragma. Conidióforos solitários, eretos, marrom-médios, lisos, subcilíndricos, retos a geniculados-sinuosos, não ramificados, septados, proliferando percurrentemente. Células conidiogênicas terminais, subcilíndricas, retas ou flexuosas, marrom-médias, mono- ou poliblásticas, às vezes simpodiais (principalmente em cultura). Conídios solitários, septados, subcilíndricos, retos, ápice obtuso, às vezes com uma capa escura, base truncada, com ou sem uma franja marginal minúscula, lisos, marrom-claros a médios, gutulados; hilo não espessado, não escurecido.
Espécie-tipo: Sympodiella acicola W.B. Kendr.
Notas: Emendamos Sympodiella para incluir espécies com um morfo sinassexual semelhante a Repetophragma. Uma nova espécie é introduzida como S. quercina e, adicionalmente, duas novas combinações são propostas e discutidas abaixo.
Sympodiella acicola W.B. Kendr., Trans. Br. Mycol. Soc. 41: 519. 1958. Figs 54–56.
Tipo: Reino Unido, Cheshire, em Pinus sylvestris (Pinaceae), 1956, W.B. Kendrick, holótipo IMI 69967. Países Baixos, Baarn, De Vuursche, em Pinus sylvestris, 12 Abr. 1982, G.S. de Hoog (epítipo designado aqui CBS H-1620 MBT385535, cultura ex-epítipo CBS 487.82).
Morfo sinassexual semelhante a Repetophragma. Conidióforos marrons, lisos, proliferando percurrentemente, até 25 µm de comprimento, 2–3,5 µm de largura na base. Células conidiogênicas terminais, marrons. Conídios 3–4(–7)-septados, subcilíndricos, retos, ápice obtuso, base truncada, com uma franja marginal minúscula, lisos, marrom-claros a médios, 13–35 × 3–4 µm.
Notas: Conídios em S. acicola foram considerados dispostos em cadeias não ramificadas (Kendrick 1958, Seifert et al. 2011). Durante o exame do espécime CBS H-1620, alguns desses conídios se assemelham a fragmoconídios constritos nos septos, semelhantes aos descritos em Wiesneriomyces, pois frequentemente permanecem conectados após se separarem das células conidiogênicas. Em cultura, no entanto (CBS 487.82), são prontamente decíduos. Além disso, em um espécime de Sympodiella acicola (CBS H-1620), os conidióforos estavam misturados com conidióforos semelhantes a Repetophragma, descritos aqui como o morfo sinassexual de Sympodiella acicola. Curiosamente, em cultura (CBS 487.82) observamos alguns conidióforos com proliferações percurrentes e os conídios 1-septados eram mais abundantes do que no substrato natural. Esta espécie foi relatada principalmente em Pinus spp. (Kendrick 1958).
Sympodiella alternata (Tubaki & Saito) Crous & Hern.-Restr., comb. nov. MycoBank MB829352. Fig. 57.
Basônimo: Endophragmia alternata Tubaki & Saito, Trans. Brit. Mycol. Soc. 52: 477. 1969.
Tipo: Japão, Sendai, em acículas caídas de Pinus densifolia (Pinaceae), 1966, T. Saitô (holótipo IFO H-11600, cultura ex-tipo IFO 8933 = CBS 326.69).
Nota: Sympodiella alternata é conhecida apenas pelo morfo sinexual semelhante a repetophragma da Ásia. Durante este estudo, examinamos a cultura ex-tipo de Sympodiella alternata (CBS 326.69). Os conídios eram semelhantes aos descritos no protólogo, com uma capa escura no ápice dos conídios, mas eram ligeiramente menores, com menos septos (30–36 × 5–6 µm, 5–8-septados vs. (37–)40–46(–70) × 5–6(–7) µm, (7–)8-septados). Os conidióforos proliferam percurrentemente e, às vezes, foram observados conidióforos geniculados. Esta espécie é conhecida em Pinus densifolia do Japão e em um substrato desconhecido da China (Shenoy et al. 2006).
Sympodiella goidanichii (Rambelli) Crous & Hern.-Restr., comb. nov. MycoBank MB829353.
Basônimo: Ceratosporella goidanichii Rambelli, R.C. Secc. Accad. Sci. Ist. Bologna, sér. 6, 5: 3. 1958.
Sinônimos: Sporidesmium goidanichii (Rambelli) S. Hughes, N.Z. J. Bot. 17: 162. 1979.
Repetophragma goidanichii (Rambelli) W.P. Wu, Fungal Diversity Res. Ser. 15: 80. 2005.
Tipo: Itália, em cúpula de Fagus sylvatica (Fagaceae), data de coleta desconhecida, A. Rambelli, cultura ex-tipo CBS 136.58.
Nota: Sympodiella goidanichii foi descrita de Fagus sylvatica na Itália como Ceratosporella goidanichii. Hughes (1979) considerou Ceratosporella goidanichii e Endophragmia alternata como espécies coespecíficas e as incluiu em Sporidesmium devido à proliferação sucessiva dos conidióforos. Durante seus estudos, a cepa tipo de Ceratosporella goidanichii não produziu conídios e as observações foram baseadas na cultura esporulante de Endophragmia alternata e nas descrições fornecidas por e. Posteriormente, esta espécie foi transferida para Repetophragma, devido às proliferações percurrentes dos conidióforos e à presença de conídios euseptados (Wu & Zhuang 2005). Em nosso estudo, a cepa ex-tipo de Ceratosporella goidanichii (CBS 136.58) permanece estéril e a nova combinação em Sympodiella é baseada principalmente na análise filogenética.
Sympodiella quercina Crous & R.K. Schumach., sp. nov. MycoBank MB829351. Figs 58–60.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero hospedeiro Quercus do qual foi isolada.
Micélio composto por hifas de marrom claro a médio, lisas, septadas, ramificadas, com 2,5–3 µm de diâmetro. Morfo semelhante a Sympodiella. Conidióforos solitários, eretos, marrom médio, lisos, subcilíndricos, retos a flexuosos, não ramificados, septados, 48,5–68 × 3–5 µm. Células conidiogênicas terminais, subcilíndricas, marrom médio, poliblásticas, simpodiais, 15–20 × 3–3,5 µm. Conídios septados, subcilíndricos a aciculares, afinando, ápice obtuso, base truncada, lisos, hialinos, 30–74 × 2–3,5 µm, ápice com 1,5–2,5 µm de largura. Morfo sinassexual semelhante a Repetophragma. Conidióforos solitários, eretos, marrom médio, lisos, subcilíndricos, retos a geniculados-sinuosos, não ramificados, 2–6-septados, 25–90 × 5–6 µm. Células conidiogênicas terminais, subcilíndricas, marrom médio, 6–17 × 5–6 µm, proliferando percurrentemente. Conídios solitários, subcilíndricos, ápice obtuso, base truncada, marrom médio (células terminais frequentemente sub-hialinas), lisos, gutulados, retos, (4–)6-septados, (40–)47–55(–65) × (5–)6–6,5(–7) µm; hilo não espessado, não escurecido, com 5–6,5 µm de diâmetro, com franja marginal minúscula.
Características de cultura: Colônias erupentes, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, atingindo 12 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA superfície umbra, reverso castanho; em PDA superfície umbra, reverso cinza-ferro; em OA superfície umbra.
Tipo: Alemanha, perto de Berlim, em floresta de Pinus sylvestris, sobre folha caída de Quercus robur (Fagaceae), 19 abr. 2017, H. Schreiber & R.K. Schumacher, HPC 2106 = RKS 94 (holótipo CBS H-23829, cultura ex-tipo CPC 33903 = CBS 145028).
Material adicional examinado: Reino Unido, Lancashire, sobre serapilheira de Betula sp., 17 jan. 1968, depositado por J.C. Frankland, CBS 987.70.
Notas: Em substrato natural, esta espécie apresenta conidióforos do tipo Repetophragma de até 210 µm de comprimento, com proliferações percurrentes e conídios medindo 32–44 × 5–7 µm, com ou sem um capuz escuro no ápice dos conídios. Além dos conidióforos do tipo Repetophragma, também foram encontrados conidióforos do tipo Sympodiella e, devido à estreita relação filogenética com Sympodiella acicola, descrevemos também o morfo sinassexual. Nesta espécie, os conidióforos do tipo Sympodiella produzem fragmoconídios hialinos frágeis, semelhantes aos observados em Cylindrosympodium (Kendrick & Castañeda 1990) e em algumas espécies de Subulispora (Sutton 1973, Kirk 1985). Além disso, a rede superficial de hifas escuras pigmentadas descrita em S. acicola (Kendrick 1985) também foi observada em S. quercina.
Uma linhagem adicional (CBS 987.70), previamente identificada como Repetophragma goidanichii, estava filogeneticamente relacionada a S. quercina. No entanto, os tamanhos conidiais observados nesta cultura estão abaixo da faixa observada em CPC 33903 e também apresentam mais septos (35–50 × 4–7 µm, 6–7(–9)-septados); o capuz apical escuro foi evidente apenas em alguns conídios mais jovens, e os conidióforos não estavam bem desenvolvidos. O morfo sinassexual não foi observado em nenhuma das culturas de S. quercina.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, os hits mais próximos usando a sequência ITS apresentaram maior similaridade com Sporidesmium goidanichii (GenBank MH860019.1; Identidades = 486/489 (99 %), 2 lacunas (0 %)), Septonema crispulum (GenBank MH862607.1; Identidades = 402/445 (90 %), 8 lacunas (1 %)) e Sympodiella acicola (GenBank KY853468.1; Identidades = 432/488 (89 %), 18 lacunas (3 %)). Os hits mais próximos usando a sequência LSU são Repetophragma goidanichii (GenBank DQ408574.1; Identidades = 836/848 (99 %), 1 lacuna (0 %)), Sympodiella acicola (GenBank KY853530.1; Identidades = 844/858 (98 %), sem lacunas) e Cylindrosympodium lauri (GenBank EU035414.1; Identidades = 836/859 (97 %), 2 lacunas (0 %)).
Sympoventuria regnans Crous, Persoonia 39: 425. 2017. Fig. 61.
Micélio consistindo de hifas marrom-médio, lisas, septadas, ramificadas, com 1,5–2 µm de diâmetro. Conidióforos reduzidos a células conidiogênicas ou a uma célula de suporte. Células conidiogênicas surgindo diretamente das hifas, subcilíndricas, marrom-médio, lisas, 7–18 × 3(–4) µm, com 1(–3) lóculos terminais de ponta achatada, 1(–1,5) µm de diâmetro, espessados e escurecidos. Conídios marrom-claros, gutulados, de parede lisa, 0(–1)-septados, fusoides-elipsoides, ocorrendo em cadeias acropetais principalmente não ramificadas de até 10, (10–)13–16(–18) × (2–)3 µm; lóculos espessados e um tanto escurecidos, 1(–1,5) µm de diâmetro.
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, atingindo 10 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA superfície isabelina, reverso umbra; em PDA superfície umbra, reverso tijolo escuro; em OA superfície umbra.
Material examinado: Austrália, Nova Gales do Sul, 31.366346S 151.580038E, Ngulin Nature Reserve, Hell Hole Forest Rd, em folhas de Eucalyptus pauciflora (Myrtaceae), 13 Jul. 2016, A.J. Carnegie, HPC 1454, cultura CPC 31820 = CBS 144605.
Notas: Sympoventuria foi introduzido para um gênero de ascomicetos com morfos assexuais semelhantes a Sympodiella ocorrendo em serapilheira de folhas de Eucalyptus na África do Sul. Sympoventuria regnans é descrito a partir de folhas de E. regnans coletadas na La Trobe State Forest, Victoria, Austrália, e possui morfologia semelhante à presente coleta.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS apresentaram maior similaridade com Sympoventuria regnans (GenBank MG386066.1; Identidades = 568/569 (99 %), sem gaps), Fusicladium eucalypti (GenBank HQ599600.1; Identidades = 548/573 (96 %), 5 gaps (0 %)) e Fusicladium eucalypticola (GenBank NR_145402.1; Identidades = 516/538 (96 %), 4 gaps (0 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Sympoventuria regnans (GenBank NG_058523.1; Identidades = 852/852 (100 %), sem gaps), Fusicladium eucalypticola (GenBank KX228329.1; Identidades = 861/872 (99 %), 1 gap (0 %)) e Fusicladium eucalypti (GenBank HQ599601.1; Identidades = 863/877 (98 %), 3 gaps (0 %)). Nenhuma sequência tef1 de Sympoventuria está disponível para comparação no GenBank; correspondências distantes incluem Pallidocercospora crystallina (GenBank MF135483.1; Identidades = 189/201 (94 %), 3 gaps (1 %)), Parapallidocercospora thailandica (como Mycosphaerella thailandica, GenBank AY840477.2; Identidades = 176/184 (96 %), sem gaps) e Phyllosticta ericarum (GenBank KR025451.1; Identidades = 179/189 (95 %), sem gaps). Correspondências distantes usando a sequência tub2 apresentaram maior similaridade com Sympoventuria regnans (GenBank MG386169.1; Identidades = 328/373 (88 %), 9 gaps (2 %)), Didymocyrtis brachylaenae (GenBank MH327896.1; Identidades = 837/946 (88 %), 12 gaps (1 %)) e Phoma nigrificans (GenBank AY749030.1; Identidades = 836/945 (88 %), 11 gaps (1 %)).
Tubakia suttoniana U. Braun & Crous, Fungal Syst. Evol. 1: 90. 2018. Fig. 62.
Em SNA: Picnotírios não se desenvolvendo. Columela central se desenvolvendo com conidióforos agregados, marrons e lisos. Conidióforos afinando em direção ao ápice, ramificados ou não, 0–2-septados, 10–30 × 2,5–3 µm. Células conidiogênicas marrom-médias, lisas, subcilíndricas com ápice afilado, fialídicas, às vezes com proliferações percurrentes, 10–15 × 2,5–3 µm. Conídios asseptados, solitários, marrom-claros, lisos, granulares, gutulados, elipsoides, com hilo truncado minúsculo, 1–2 µm de diâmetro, (11–)13–14(–15) × 7(–8) µm.
Características de cultura: Colônias erumpentes, espalhando-se em círculos concêntricos, com micélio aéreo moderado a profuso, cobrindo a placa após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, zonas superficiais de cinza-oliváceo pálido a cinza-oliváceo, reverso cinza-oliváceo; em PDA, zonas superficiais de cinza-oliváceo a cinza-fumaça, reverso cinza-oliváceo; em OA, superfície cinza-olivácea.
Material examinado: Nova Zelândia, Auckland, Takanini, Marango PK way, em folhas de Quercus sp. (Fagaceae), 16 de maio de 2016, R. Thangavel, CBS H-23808, cultura CPC 32745 = T16_01981A = CBS 144591.
Notas: Tubakia suttoniana é conhecida por cancros em ramos e caules de Quercus cerris na Nova Zelândia (CBS 229.77), e CPC 32745 representa um registro adicional desse país.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, a sequência ITS foi idêntica a Tubakia suttoniana (GenBank MG591919.1; Identidades = 605/605 (100 %)); outros hits mais próximos incluíram Tubakia californica (GenBank MG591847.1; Identidades = 602/603 (99 %), 1 lacuna (0 %)), e Tubakia melnikiana (GenBank MG591893.1; Identidades = 600/601 (99 %), 1 lacuna (0 %)). Os hits mais próximos usando a sequência LSU são Tubakia japonica (GenBank MG591979.1; Identidades = 882/882 (100 %), sem lacunas), Tubakia seoraksanensis (GenBank KP260501.1; Identidades = 845/845 (100 %), sem lacunas), e Tubakia californica (GenBank MG591940.1; Identidades = 844/844 (100 %), sem lacunas). Os hits mais próximos usando a sequência rpb2 apresentaram maior similaridade com Tubakia suttoniana (GenBank MG976493.1; Identidades = 940/941 (99 %), sem lacunas), Tubakia californica (GenBank MG976452.1; Identidades = 933/934 (99 %), sem lacunas), e Tubakia japonica (GenBank MG976469.1; Identidades = 991/993 (99 %), sem lacunas). Os hits mais próximos usando a sequência tef1 apresentaram maior similaridade com Tubakia suttoniana (GenBank MG592108.1; Identidades = 467/467 (100 %), sem lacunas), Tubakia sp. 1 (GenBank MG592101.1; Identidades = 550/562 (98 %), sem lacunas), e Tubakia japonica (GenBank MG592075.1; Identidades = 550/562 (98 %), sem lacunas). Os hits mais próximos usando a sequência tub2 apresentaram maior similaridade com Tubakia suttoniana (GenBank MG592201.1; Identidades = 505/507 (99 %), 1 lacuna (0 %)), Tubakia seoraksanensis (GenBank MG592190.1; Identidades = 487/492 (99 %), 1 lacuna (0 %)), e Tubakia japonica (GenBank MG592165.1; Identidades = 508/515 (99 %), 1 lacuna (0 %)).
Turquoiseomycetales Crous, ord. nov. MycoBank MB829363.
Turquoiseomycetaceae Crous, fam. nov. MycoBank MB829461.
Turquoiseomyces Crous, gen. nov. MycoBank MB829363.
Etimologia: O nome refere-se à descoloração verde-azulada característica do tecido do hospedeiro ao redor dos conidiomas.
Conidiomas solitários a agregados, marrom-escuros, globosos, picnidiais, abrindo-se por ruptura irregular; parede de 6–8 camadas de textura intricata marrom. Conidióforos revestindo a cavidade interna, extensivamente ramificados, septados, firmemente agregados, verde-marrom pálido, finamente rugosos, subcilíndricos. Células conidiogênicas ampuliformes a subcilíndricas, verde-marrom pálido, finamente rugosas, terminais e intercalares, proliferando percurrentemente. Conídios solitários, subcilíndricos, gutulados, de parede lisa, medianamente 1-septados, ápice intumescido com capa mucóide, base ligeiramente afilada, truncada, refletiva.
Espécie-tipo: Turquoiseomyces eucalypti Crous.
Turquoiseomyces eucalypti Crous, sp. nov. MycoBank MB829364. Fig. 63.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero hospedeiro Eucalyptus do qual foi isolado.
Conidiomas solitários a agregados, marrom-escuros, globosos, picnidiais, abrindo-se por ruptura irregular, 250–350 µm de diâmetro; parede com 6–8 camadas de textura intricata marrom. Conidióforos revestindo a cavidade interna, extensivamente ramificados, septados, fortemente agregados, 10–25 × 3–4 µm, verde-marrom-claro, finamente rugosos, subcilíndricos. Células conidiogênicas ampuliformes a subcilíndricas, verde-marrom-claro, finamente rugosas, terminais e intercalares, 5–10 × 3–4 µm, proliferando percurrentemente. Conídios solitários, subcilíndricos, gutulados, de parede lisa, medianamente 1-septados, ápice intumescido com capa mucoide, base levemente afilada, truncada, reflexiva, 1,5–2 µm de diâmetro, retos a flexuosos, (50–) 55–60(–80) × 3(–4) µm.
Características em cultura: Colônias erupentes, espalhando-se, superfície dobrada, com micélio aéreo esparso e margem lisa, lobada, atingindo 10 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, superfície cinza-esverdeada, reverso cinza-fumaça; em PDA, superfície cinza-olivácea, reverso cinza-fumaça; em OA, superfície cinza-ferro no centro, creme na região externa.
Typus: Austrália, Nova Gales do Sul, Cobb Highway, em folhas de Eucalyptus leptophylla (Myrtaceae), ago. 2017, B.A. Summerell, HPC 2220 (holótipo CBS H-23834, cultura ex-tipo CPC 34399 = CBS 145126).
Notas: Este fungo muito evidente foi observado pela primeira vez em folhas, onde os conídios estavam circundados por tecido com uma descoloração verde-azulada, diferente dos coelomicetos folícolas normais em Eucalyptus que geralmente possuem estruturas com tons de marrom a preto. Em cultura, novamente produziu colônias cinza-esverdeadas em MEA. A presente coleção não é conhecida a partir de dados de DNA disponíveis no GenBank, e também é morfologicamente distinta, representando uma família e ordem distintas em Lecanoromycetes.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos do GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência de ITS tiveram maior similaridade com Lecanora subcarnea (GenBank AY541267.1; Identidades = 313/374 (84%), 25 lacunas (6%)), Pseudogymnoascus pannorum var. pannorum (GenBank MH866140.1; Identidades = 313/374 (84%), 27 lacunas (7%)) e Ciliciopodium hyalinum (GenBank KM231857.1; Identidades = 313/374 (84%), 27 lacunas (7%)). As correspondências mais próximas usando a sequência de LSU são Umbilicaria torrefacta (GenBank JQ740001.1; Identidades = 818/886 (92%), 5 lacunas (0%)), Umbilicaria muehlenbergii (GenBank JQ739997.1; Identidades = 814/886 (92%), 4 lacunas (0%)) e Acarospora anomala (GenBank LN810758.1; Identidades = 813/885 (92%), 3 lacunas (0%)). Nenhuma correspondência significativa foi obtida quando a sequência tub2 foi usada em buscas blastn e megablast.
Typhicola Crous, gen. nov. MycoBank MB829599.
Etimologia: Nome refere-se ao gênero Typha sobre o qual foi coletado.
Ascomata gregários ao longo das nervuras foliares, imersos, globosos com ostíolo central, algo papilados a erumpentes, pretos, macios. Pseudoparáfises numerosas, hialinas, lisas, ramificadas com anastomoses, semelhantes a hifas. Ascos 8-esporados, bitunicados, fissitunicados, subcilíndricos, com câmara ocular bem desenvolvida, parede espessa, papilados curtos. Ascósporos elipsoides, septados, retos a levemente curvos, células terminais cônicas arredondadas, marrons, parede espessa, proeminentemente constritos nos septos espessos, com bainha mucilaginosa.
Espécie-tipo: Typhicola typharum (Desm.) Crous.
Typhicola typharum (Desm.) Crous, comb. nov. MycoBank MB829600. Fig. 64.
Basônimo: Sphaeria scirpicola var. typharum Desm., Pl. cryptog. Fr, ed. 2, nr. 1428. 1848.
Sinônimo: Juncaceicola typharum (Desm.) Tennakoon et al., Cryptog. Mycol. 37: 151. 2016.
Ascomata em folhas mortas, gregários ao longo das nervuras foliares, imersos, globosos com ostíolo central, algo papilados a erumpentes, pretos, macios, 100–150 µm de diâm. Pseudoparáfises numerosas, hialinas, lisas, ramificadas com anastomoses, semelhantes a hifas, 2–3 µm de diâm. Ascos 8-esporados, bitunicados, fissitunicados, subcilíndricos, com câmara ocular bem desenvolvida, 2 µm de diâm, parede espessa, papilados curtos, 80–100 × 20–25 µm. Ascósporos elipsoides, 3-septados, com poro central no septo, mais largos na segunda célula a partir do ápice, retos a levemente curvos, células terminais cônicas arredondadas, marrom-dourados, parede espessa (< 0,5 µm), proeminentemente constritos nos septos espessos, exósporo verrucoso, endósporo liso, finamente gutulados, com bainha mucilaginosa (até 3 µm de diâm), cobrindo todo o ascósporo (quando montado em água), (23–)27–29(–31) × (8–)9–10(–11) µm.
Características de cultura: Colônias erumpentes, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem plumosa, lobada, atingindo 45 mm de diâm após 2 semanas a 25 °C. Em MEA e PDA, superfície e reverso cinza-oliváceo; em OA, superfície cinza-ferro.
Tipo: França, em folhas de Typha sp. (Typhaceae), Desm., exsicata “Plantes Cryptogames de France, ed. 2: no. 1428 (1848)” (lectótipo designado aqui em PC, MBT385534). Alemanha, próximo a Berlim, folha de Typha sp. (Typhaceae), 1 abr. 2017, R.K. Schumacher, HPC 2025 = RKS 84 (epítipo designado aqui CBS H-23819, MBT385272, cultura ex-epítipo CPC 33271 = CBS 145043).
Notas: Este fungo ocorre comumente na Europa, esporula bem em cultura, mas produziu apenas o morfo sexual no presente estudo. introduziu o gênero Juncaceicola e a combinação J. typharum, mas não conseguiu localizar nenhum material-tipo de Sphaeria scirpicola var. typharum, e baseou sua nova combinação em CBS 296.54 (em Nardus stricta, Suíça), que provavelmente representa uma espécie não descrita de Juncaceicola. Embora filogeneticamente distintos, há morfologicamente pouca diferença entre Typhicola e Juncaceicola, sendo os dois gêneros melhor distinguidos com base em dados de DNA.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência de ITS tiveram maior similaridade com Juncaceicola typharum (como Leptosphaeria typharum, GenBank AF439465.1; Identidades = 507/518 (98%), 1 gap (0%)), Pleospora typhicola (GenBank KF636768.1; Identidades = 453/486 (93%), 12 gaps (2%)) e Neocamarosporium goegapense (GenBank KJ869163.1; Identidades = 519/587 (88%), 26 gaps (4%)). As correspondências mais próximas usando a sequência de LSU são Pleospora typhicola (GenBank KF636774.1; Identidades = 848/862 (98%), 2 gaps (0%)), Camarosporidiella robiniicola (GenBank MF434266.1; Identidades = 832/849 (98%), sem gaps), Camarosporium laburnicola (GenBank KY497779.1; Identidades = 845/863 (98%), 1 gap (0%)) e Juncaceicola typharum (GenBank MH868883.1; Identidades = 834/863 (97%), 3 gaps (0%)). As correspondências distantes usando a sequência de rpb2 tiveram maior similaridade com Pleospora incompta (GenBank KC584504.1; Identidades = 740/867 (85%), 4 gaps (0%)), Comoclathris compressa (GenBank KC584498.1; Identidades = 736/867 (85%), 4 gaps (0%)) e Pleospora typhicola (GenBank KC584505.1; Identidades = 733/865 (85%), sem gaps). As correspondências distantes usando a sequência de tef1 tiveram maior similaridade com Juncaceicola typharum (como Phaeosphaeria typharum, GenBank KF253148.1; Identidades = 123/131 (94%), sem gaps), Dendryphion penicillatum (GenBank AY375371.1; Identidades = 261/281 (93%), 6 gaps (2%)), Alternaria ventricosa (GenBank KY352501.1; Identidades = 272/301 (90%), 5 gaps (1%)) e Lasiodiplodia iranensis (GenBank KU997110.1; Identidades = 266/295 (90%), 4 gaps (1%)). As correspondências distantes usando a sequência de tub2 tiveram maior similaridade com Alternaria solani (GenBank CP022033.1; Identidades = 916/981 (93%), 9 gaps (0%)), Alternaria alternata (GenBank KJ396337.1; Identidades = 905/977 (93%), 7 gaps (0%)) e Alternaria cucumerina (GenBank HQ413318.1; Identidades = 903/977 (92%), 7 gaps (0%)).
Wojnowiciella dactylidis (Wijayaw. et al.) Hern.-Restr. & Crous, Sydowia 68: 221. 2016. Fig. 65.
Basônimo: Wojnowicia dactylidis Wijayaw. et al., Fungal Diversity 72: 144. 2015.
Conidiomas erumpentes, picnidiais, solitários, globosos, papilados, 200–300 µm de diâmetro, com 1–2 ostíolos; parede de 3–6 camadas de textura angular marrom. Microconidióforos reduzidos a células conidiogênicas revestindo a cavidade interna, hialinas, lisas, doliiformes a ampuliformes, 4–5 × 3–4 µm, fialídicas, com espessamento periclinal. Microconídios solitários, hialinos, lisos, gutulados, asseptados, subcilíndricos, ápice obtuso, base truncada, (3–)4(–5) × 2 µm.
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado e margem lisa, lobada, cobrindo a placa após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, PDA e OA, superfície isabelina, reverso isabelino a avelã, com zonas de canela.
Material examinado: Nova Zelândia, Auckland, Grey Lynn, parque Grey Lynn, em Dypsis sp. (Arecaceae), 5 out. 2016, R. Thangavel, CBS H-23807, cultura T16_03296B = CPC 32741 = CBS 145077.
Notas: Wojnowiciella dactylidis foi descrita a partir de Dactylis glomerata coletada na Itália, e este é o primeiro registro na Nova Zelândia. Infelizmente, apenas o morfo microconidial foi observado em cultura.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência de ITS apresentaram maior similaridade com Wojnowiciella dactylidis (GenBank LT990660.1; Identidades = 572/572 (100 %), sem gaps), Wojnowiciella cissampeli (GenBank NR_155972.1; Identidades = 568/579 (98 %), 6 gaps (1 %)) e Wojnowicia rosicola (GenBank MG828979.1; Identidades = 554/568 (98 %), 8 gaps (1 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência de LSU são Wojnowicia rosicola (GenBank MG829091.1; Identidades = 846/847 (99 %), sem gaps), Wojnowicia italica (GenBank KX430001.1; Identidades = 846/847 (99 %), sem gaps) e Wojnowiciella dactylidis (GenBank LT990632.1; Identidades = 844/845 (99 %), 1 gap (0 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência de tef1 apresentaram maior similaridade com Wojnowicia italica (GenBank KX430003.1; Identidades = 438/440 (99 %), sem gaps), Wojnowiciella dactylidis (GenBank LT990613.1; Identidades = 423/425 (99 %), sem gaps) e Wojnowiciella cissampeli (GenBank LT990616.1; Identidades = 463/469 (99 %), sem gaps). Nenhuma sequência de tub2 de Wojnowiciella ou Wojnowicia está disponível para comparação no GenBank; correspondências distantes usando a sequência de tub2 apresentaram maior similaridade com Fenestella fenestrata (GenBank MF795893.1; Identidades = 247/280 (88 %), 7 gaps (2 %)), Didymocyrtis banksiae (GenBank KY979923.1; Identidades = 251/284 (88 %), 18 gaps (6 %)) e Didymocyrtis foliaceiphila (como Diederichomyces foliaceiphila, GenBank KP170700.1; Identidades = 246/280 (88 %), 8 gaps (2 %)).
Xenodevriesiaceae Crous, fam. nov. MycoBank MB829462.
Xenodevriesia Crous, gen. nov. MycoBank MB829365.
Etimologia: O nome reflete o fato de que este gênero é semelhante, mas distinto do gênero Devriesia.
Micélio consistindo de hifas marrom-médias, lisas, septadas, ramificadas. Conidióforos dimórficos. Microconidióforos reduzidos a células conidiogênicas nas hifas, eretos, cilíndricos, marrom-médios, lisos com extremidades truncadas, proliferando simpodialmente. Macroconidióforos eretos, cilíndricos, retos a geniculado-sinuosos, marrom-médios, lisos, não ramificados ou ramificados acima, septados. Células conidiogênicas terminais ou laterais em conidióforos ramificados, marrom-médias, lisas, cilíndricas, proliferando simpodialmente; loci truncados, inconspícuos, ligeiramente escurecidos, não refringentes. Conídios marrom-médios, lisos, gutulados, subcilíndricos a estreitamente obclavados, ápice obtuso a truncado, base truncada, ocorrendo em cadeias ramificadas, septados; hilos inconspícuos a ligeiramente escurecidos e espessados, não refringentes.
Espécie-tipo: Xenodevriesia strelitziicola (Arzanlou & Crous) Crous.
Xenodevriesia strelitziicola (Arzanlou & Crous) Crous, comb. nov. MycoBank MB829366.
Basônimo: Devriesia strelitziicola Arzanlou & Crous, Stud. Mycol. 64: 38. 2009.
Notas: Devriesia strelitziicola foi introduzida por) para um fungo que era semelhante a Devriesia e Pseudocercospora em morfologia, mas que se revelou filogeneticamente distinto de ambos os gêneros. É morfologicamente distinto de Devriesia por não produzir clamidósporos, e de Pseudocercospora por apresentar hilos conidiais algo escurecidos e espessados. Filogeneticamente, também é claramente distinto, e representa uma nova família em Capnodiales.
Zasmidium hakeicola Crous, sp. nov. MycoBank MB829367. Fig. 66.
Etimologia: O nome refere-se ao gênero hospedeiro Hakea do qual foi isolado.
Micélio constituído por hifas lisas, marrom-claras, septadas, ramificadas, de 2–2,5 µm de diâmetro. Conidióforos solitários, eretos, geniculados-flexuosos, ramificados ou não, subcilíndricos, marrom-médios, finamente verruculosos, de parede espessa, gutulados, multiseptados, 100–200 × 3–5 µm, surgindo de hifas superficiais ou de algumas células de um estroma pouco desenvolvido. Células conidiogênicas terminais, às vezes intercalares, subcilíndricas, marrom-médias, finamente verruculosas, proliferando simpodialmente, 25–50 × 5–7 µm; loci proeminentemente espessados e escurecidos, refringentes, 2,5–3 µm de diâmetro. Conídios solitários, obclavados, ápice obtuso, base obcônica truncada, verruculosos, marrom-médios, retos, (40–)47–55(–65) × 8(–9) µm; hilo espessado, escurecido e refringente, 3–4 µm de diâmetro; conídios às vezes bifurcados, 3(–5)-septados.
Características de cultura: Colônias eruptivas, espalhadas, com micélio aéreo esparso a moderado e margem plumosa, atingindo 4 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA e PDA, superfície cinza-oliváceo pálido a cinza-oliváceo, reverso cinza-oliváceo; em OA, superfície cinza-oliváceo pálido a cinza-oliváceo.
Tipo: Austrália, Nova Gales do Sul, Jardim Botânico Australiano Mount Annan, em folhas de Hakea corymbosa (Proteaceae), 25 nov. 2016, P.W. Crous, HPC 1722 (holótipo CBS H-23806, cultura ex-tipo CPC 32703 = CBS 144590).
Notas: Uma espécie morfologicamente semelhante, Zasmidium grevilleae (conídios 3–7(–12)-septados, (30–)50–65(–80) × (5–)6–7 μm), foi descrita de folhas de Grevillea decurrens coletadas na Austrália (Crous et al. 2009a, Videira et al. 2017). A presente coleta de Hakea difere dessa espécie por apresentar conídios mais curtos e largos, com menos septos.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos GenBank do NCBI, as correspondências mais próximas usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Zasmidium grevilleae (GenBank NR_156522.1; Identidades = 533/538 (99 %), 1 gap (0 %)), Zasmidium proteacearum (como Verrucisporota proteacearum, GenBank FJ839635.1; Identidades = 513/539 (95 %), 23 gaps (4 %)), e Zasmidium velutinum (como Periconiella velutina, GenBank EU041781.1; Identidades = 492/545 (90 %), 16 gaps (2 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência LSU são Zasmidium proteacearum (como Verrucisporota proteacearum, GenBank FJ839671.2; Identidades = 858/860 (99 %), sem gaps), Zasmidium grevilleae (GenBank MH874876.1; Identidades = 857/860 (99%), sem gaps), e Zasmidium biverticillatum (como Ramichloridium biverticillatum, GenBank EU041853.1; Identidades = 834/846 (99 %), 2 gaps (0 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência actA tiveram maior similaridade com Zasmidium proteacearum (como Verrucisporota proteacearum, GenBank KF903478.1; Identidades = 433/439 (99 %), 1 gap (0 %)), Zasmidium citri-griseum (GenBank KF903676.1; Identidades = 392/430 (91 %), 2 gaps (0 %)), e Parapallidocercospora thailandica (como Mycosphaerella thailandica, GenBank EU514333.1; Identidades = 373/410 (91 %), 6 gaps (1 %)). As correspondências mais próximas usando a sequência rpb2 tiveram maior similaridade com Zasmidium proteacearum (GenBank MF951721.1; Identidades = 677/683 (99 %), sem gaps), Zasmidium grevilleae (GenBank MF951705.1; Identidades = 662/668 (99 %), sem gaps), e Zasmidium musicola (GenBank MF951717.1; Identidades = 663/761 (87 %), sem gaps). As correspondências mais próximas usando a sequência tub2 tiveram maior similaridade com Zasmidium commune (GenBank KY979928.1; Identidades = 721/787 (92 %), sem gaps), Pseudocercospora fijiensis (GenBank XM_007921924.1; Identidades = 702/789 (89 %), sem gaps), e Ramularia collo-cygni (GenBank JN003648.1; Identidades = 701/789 (89 %), sem gaps).
Zygosporium pseudogibbum Crous, Fungal Syst. Evol. 1: 213. 2018. Fig. 67.
Conidióforos solitários, eretos, consistindo de 1–2 células basais marrom-claras formando um estipe, 8–20 × 3–4 µm, dando origem a uma vesícula terminal curvada, marrom-escura, 12–15 × 5–7 µm. Células conidiogênicas dispostas em um verticilo de 3–4 em uma vesícula terminal, hialinas, lisas, reniformes, 5–6 × 3.5–4 µm. Vesícula com célula apical única, 4–6 × 3–4 µm, marrom-clara, cilíndrica, com ápice obtuso e colarinho proeminente. Conídios solitários, globosos, verruculosos, levemente oliváceos, (5–)5,5(–6) µm de diâmetro.
Características de cultura: Colônias planas, espalhadas, com micélio aéreo moderado, superfície dobrada e margem uniforme e lisa, atingindo 25 mm de diâmetro após 2 semanas a 25 °C. Em MEA, PDA e OA, superfície branco-sujo, reverso amarelo-claro.
Material examinado: Austrália, Nova Gales do Sul, Jardim Botânico Australiano Mount Annan, em folhas de Macrozamia miquelii (Zamiaceae), 25 de novembro de 2016, P.W. Crous, HPC 1734, CBS H-23580, cultura CPC 32120 = CBS 144442.
Notas: Zygosporium pseudogibbum (em folhas de Eucalyptus da Malásia) é intimamente relacionado a Z. gibbum, um táxon europeu (isolado de referência, FMR 13130 = CBS 137306; serapilheira das Ilhas Canárias). Morfologicamente, esses táxons são muito semelhantes e, portanto, são melhor distinguidos com base em suas sequências de DNA.
Com base em uma busca megablast no banco de dados de nucleotídeos do GenBank do NCBI, os hits mais próximos usando a sequência ITS tiveram maior similaridade com Zygosporium mycophilum (GenBank MH856563.1; Identidades = 562/565 (99 %), 2 gaps (0 %)), Zygosporium pseudogibbum (GenBank NR_159072.1; Identidades = 551/554 (99 %), 2 gaps (0 %)) e Zygosporium masonii (GenBank MH860771.1; Identidades = 527/567 (93 %), 16 gaps (2 %)).
Os hits mais próximos usando a sequência LSU são Zygosporium pseudogibbum (GenBank MH107974.1; Identidades = 839/840 (99 %), sem gaps), Atrotorquata spartii (GenBank KP325443.1; Identidades = 845/872 (97 %), 2 gaps (0 %)) e Lopadostoma fagi (GenBank KC774577.1; Identidades = 829/874 (95 %), 4 gaps (0 %)). A sequência actA teve maior similaridade com Zygosporium pseudogibbum (GenBank MH107989.1; Identidades = 526/540 (97 %), sem gaps); outros hits distantes incluem Nalanthamala psidii (GenBank KM231245.1; Identidades = 346/369 (94 %), sem gaps), Dactylonectria alcacerensis (GenBank KM231158.1; Identidades = 346/369 (94 %), sem gaps) e Dactylonectria novozelandica (GenBank KM231157.1; Identidades = 346/369 (94 %), sem gaps). A sequência tub2 teve maior similaridade com Zygosporium pseudogibbum (GenBank MH108055.1; Identidades = 461/475 (97 %), 1 gap (0 %)); outros hits distantes incluem Hypoxylon crocopeplum (GenBank AY951711.1; Identidades = 739/798 (93 %), sem gaps), Hypoxylon calileguense (GenBank KU604579.1; Identidades = 739/799 (92 %), sem gaps) e Dicyma funiculosa (GenBank KU684134.1; Identidades = 830/937 (89 %), 11 gaps (1 %)).
Adendo: validação de nomes e tipificações
Durante o curso deste estudo, encontramos vários nomes que eram inválidos com base no Código Internacional de Nomenclatura para algas, fungos e plantas (ver MycoBank e Index Fungorum) devido a uma variedade de razões. Como isso levou a problemas com novas combinações ou gêneros e famílias subsequentemente baseados nesses nomes também sendo tornados inválidos, e assim decidimos validar esses nomes abaixo.
Allelochaeta falcata (B. Sutton) Crous, Fungal Syst. Evol. 2: 288. 2018.
Basionym: Cryptostictis falcata B. Sutton, Mycol. Pap. 88: 25. 1963.
Descrições morfológicas e ilustrações: Ver).
Typus. Austrália, Victoria, em Eucalyptus sp., 1963, coletor desconhecido (holótipo Herb IMI 59166); Nova Gales do Sul, Central Tablelands, ca. 200 metros WSW da fazenda ‘Coomber’, na propriedade Coomber, ca. 8 km SW de Rylstone, S32°50'04" E149°56'13", alt. 600 ± 10 m, 17 de agosto de 2006, R. Johnstone & A.E. Orme, 734259, em Eucalyptus alligatrix (epítipo aqui designado CBS H-20744, MBT385261, culturas ex-epítipo CPC 13578 = CBS 131117).
Notas: Allelochaeta foi tratada por). Infelizmente, o espécime do holótipo foi citado incorretamente e, consequentemente, o epítipo é inválido. Isso é corrigido aqui.
Arthrocatena Egidi & Selbmann, gen. nov. MycoBank MB829384.
Sinônimo: Arthrocatena Egidi & Selbmann, Fungal Diversity 65: 159. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em referência aos conídios artríticos escuros em cadeias.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Arthrocatena tenebrosa Egidi & Selbmann.
Arthrocatena tenebrosa Egidi & Selbmann, sp. nov. MycoBank MB829385.
Sinônimo: Arthrocatena tenebrio Egidi & Selbmann, Fungal Diversity 65: 159. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em referência aos conídios artríticos escuros em cadeias.
Descrição e ilustração:.
Typus: Itália, Monte Rosa, Punta Indren, de rocha (holótipo CBS 136100, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Catenulomyces Egidi & de Hoog, gen. nov. MycoBank MB829386.
Sinônimo: Catenulomyces Egidi & de Hoog, Fungal Diversity 65: 154. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em referência às suas cadeias conidiais.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Catenulomyces convolutus Egidi & de Hoog.
Catenulomyces convolutus Egidi & de Hoog, sp. nov. MycoBank MB829387.
Sinônimo: Catenulomyces convolutus Egidi & de Hoog, Fungal Diversity 65: 154. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em referência às cadeias conidiais e à forma encaracolada dos conídios.
Descrição e ilustração:.
Typus: Espanha, La Cabrera, de rocha (holótipo CBS 118609, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Constantinomyces Egidi & Onofri, gen. nov. MycoBank MB829388.
Sinônimo: Constantinomyces Egidi & Onofri, Fungal Diversity 65: 155. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Gênero nomeado em homenagem a Constantino Ruibal, um dos primeiros a descobrir a impressionante diversidade de fungos que habitam rochas.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Constantinomyces virgultus Egidi & Onofri.
Constantinomyces macerans de Hoog & Onofri, sp. nov. MycoBank MB829389.
Sinônimo: Constantinomyces macerans de Hoog & Onofri, Fungal Diversity 65: 157. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em referência à mera morfologia de hifas finas do fungo.
Descrição e ilustração:.
Typus: Espanha, Patones, de rocha (holótipo CBS 119304, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Constantinomyces minimus de Hoog & Isola, sp. nov. MycoBank MB829390.
Sinônimo: Constantinomyces minimus de Hoog & Isola, Fungal Diversity 65: 157. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: O nome refere-se à aparência escassa do fungo.
Descrição e ilustração:.
Typus: Espanha, La Cabrera, de rocha (holótipo CBS 118766, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Constantinomyces nebulosus Isola & Zucconi, sp. nov. Mycobank MB829391.
Sinônimo: Constantinomyces nebulosus Isola & Zucconi, Fungal Diversity 65: 157. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: O nome da espécie refere-se à morfologia escura e malformada do fungo.
Descrição e ilustração:.
Typus: Espanha, Atazar, de rocha (holótipo CBS 117941, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Constantinomyces virgultus Egidi & Onofri, sp. nov. MycoBank MB829392.
Sinônimo: Constantinomyces virgultus Egidi & Onofri, Fungal Diversity 65: 155. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: A morfologia microscópica da espécie é semelhante a um arbusto.
Descrição e ilustração:.
Typus: Espanha, Mallorca, de rocha (holótipo CBS 117930, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Exophiala bonariae Isola & Zucconi, sp. nov. MycoBank MB829393.
Sinônimo: Exophiala bonariae Isola & Zucconi, Fungal Diversity 76: 85. 2015 (2016). Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em homenagem ao cemitério de Bonaria, de onde a linhagem-tipo foi isolada.
Descrição e ilustração:.
Typus: Itália, Cagliari, (monumento funerário de Zelina Ferri) no cemitério de Bonaria, isolado de mármore (holótipo CBS 139957, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Extremaceae Quaedvl. & Crous, fam. nov. MycoBank MB829394. Sinônimo: Extremaceae Quaedvl. & Crous, Persoonia 33: 21. 2014. Nom. inval. Art. 32.1(c), ver Art. 10.6 (Shenzen).
Etimologia: Nomeado em homenagem ao gênero Extremus.
Descrição e ilustração:.
Gênero-tipo: Extremus Quaedvl. & Crous.
Extremus Quaedvl. & Crous, gen. nov. MycoBank MB829395.
Sinônimo: Extremus Quaedvl. & Crous, Persoonia 33: 21. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado devido ao seu habitat ecologicamente extremo, habitante de rochas.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Extremus adstrictus Quaedvl. & Crous.
Extremus adstrictus Quaedvl. & Crous, sp. nov. MycoBank MB829396.
Sinônimos: Devriesia adstricta Egidi & Onofri, Fungal Diversity 65: 150. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen). Extremus adstrictus (Egidi & Onofri) Quaedvl. & Crous, Persoonia 33: 22. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado devido às cadeias de conídios onde os conídios estão densamente agrupados nos septos.
Descrição e ilustração:.
Typus: Espanha, Mallorca, de rocha (holótipo CBS 118292, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Extremus antarcticus Quaedvl. & Crous, sp. nov. MycoBank MB829397.
Sinônimos: Devriesia antarctica Selbmann & de Hoog, Fungal Diversity 65: 150. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Extremus antarcticus (Selbmann & de Hoog) Quaedvl. & Crous, Persoonia 33: 22. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado devido à origem geográfica da linhagem.
Descrição e ilustração:.
Typus: Antártida, Linnaeus Terrace, de rocha (holótipo CBS 136103, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Hyphoconis Egidi & Quaedvl., gen. nov. MycoBank MB829398.
Sinônimo: Hyphoconis Egidi & Quaedvl., Fungal Diversity 65: 153. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado devido à ausência de esporulação.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Hyphoconis sterilis Egidi & Quaedvl.
Hyphoconis sterilis Egidi & Quaedvl., sp. nov. MycoBank MB829399.
Sinônimo: Hyphoconis sterilis Egidi & Quaedvl., Fungal Diversity 65: 153. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeada devido à baixa esporulação por fragmentos de hifas.
Descrição e ilustração:.
Typus: Espanha, Atazar, de rocha (holótipo CBS 118321, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Incertomyces Egidi & Zucconi, gen. nov. MycoBank MB829400.
Sinônimo: Incertomyces Egidi & Zucconi, Fungal Diversity 65: 157. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado devido às características morfológicas pobres da espécie.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Incertomyces perditus Egidi & Zucconi.
Incertomyces perditus Egidi & Zucconi, sp. nov. MycoBank MB829401.
Sinônimo: Incertomyces perditus Egidi & Zucconi, Fungal Diversity 65: 157. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado devido às características morfológicas pobres da espécie.
Descrição e ilustração:.
Typus: Itália, Monte Rosa, de rocha (holótipo CBS 136105, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Knufia karalitana Isola & Onofri, sp. nov. MycoBank MB829402.
Sinônimo: Knufia karalitana Isola & Onofri, Fungal Diversity 76: 88. 2015 (2016). Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeada após o nome antigo de Cagliari (Karalis), a cidade onde a linhagem foi isolada.
Descrição e ilustração:.
Typus: Itália, Cagliari, isolada de leão de mármore em frente à Catedral de Santa Maria (holótipo CBS 139720, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Knufia marmoricola Onofri & Zucconi, sp. nov. MycoBank MB829403.
Sinônimo: Knufia marmoricola Onofri & Zucconi, Fungal Diversity 76: 88. 2015 (2016). Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeada após o substrato, do qual a linhagem-tipo foi isolada.
Descrição e ilustração:.
Typus: Itália, isolada de travertino da colunata de São Pedro (Estado da Cidade do Vaticano) (holótipo CBS 139726, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Knufia mediterranea Selbmann & Zucconi, sp. nov. MycoBank MB829404.
Sinônimo: Knufia mediterranea Selbmann & Zucconi, Fungal Diversity 76: 88. 2015 (2016). Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeada após a Bacia do Mediterrâneo, o local de onde a linhagem foi isolada.
Descrição e ilustração:.
Typus: Itália, Cagliari, isolada de monumento funerário de mármore de Francesca Warzee, cemitério de Bonaria (holótipo CBS 139721, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Lapidomyces de Hoog & Stielow, gen. nov. MycoBank MB829405.
Sinônimo: Lapidomyces de Hoog & Stielow, Fungal Diversity 65: 159. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Fungo habitante de rochas.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Lapidomyces hispanicus de Hoog & Stielow.
Lapidomyces hispanicus de Hoog & Stielow, sp. nov. MycoBank MB829406.
Sinônimo: Lapidomyces hispanicus de Hoog & Stielow, Fungal Diversity 65: 159. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Fungo habitante de rocha da Espanha.
Descrição e ilustração:.
Tipo: Espanha, Puebla la Sierra, de rocha (holótipo CBS 118355, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Lithophila Selbmann & Isola, gen. nov. MycoBank MB829407.
Sinônimo: Lithophila Selbmann & Isola, Fungal Diversity 76: 88. 2015 (2016). Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado por suas células gutuladas.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Lithophila guttulata Selbmann & Isola.
Lithophila guttulata Selbmann & Isola, sp. nov. MycoBank MB829408.
Sinônimo: Lithophila guttulata Selbmann & Isola, Fungal Diversity 76: 90. 2015 (2016). Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado por suas células gutuladas.
Descrição e ilustração:.
Tipo: Itália, Estado da Cidade do Vaticano, isolado de pedra de mármore (cat. 37106) exposta nos Museus do Vaticano – Cortile della Pigna (holótipo CBS 139723, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Monticola Selbmann & Egidi, gen. nov. MycoBank MB829409.
Sinônimo: Monticola Selbmann & Egidi, Fungal Diversity 65: 155. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Habitante da montanha.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Monticola elongata Selbmann & Egidi.
Monticola elongata Selbmann & Egidi, sp. nov. MycoBank MB829410.
Sinônimo: Monticola elongata Selbmann & Egidi, Fungal Diversity 65: 155. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Habitante da montanha com estruturas alongadas semelhantes a conídios.
Descrição e ilustração:.
Tipo: Itália, Monte Rosa, Stolenberg, de rocha (holótipo CBS 136206, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Meristemomyces Isola & Onofri, gen. nov. MycoBank MB829411.
Sinônimo: Meristemomyces Isola & Onofri, Fungal Diversity 65: 158. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado pelo crescimento meristemático típico do fungo.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Meristemomyces frigidus Isola & Onofri.
Meristemomyces arctostaphyli Crous & M.J. Wingf., sp. nov. MycoBank MB829412.
Sinônimo: Meristemomyces arctostaphylos Crous & M.J. Wingf., Persoonia 36: 347. 2016. Nom. inval. Art 35.1 (Shenzhen).
Etimologia: O nome refere-se a Arctostaphylos, o gênero de planta do qual este fungo foi coletado.
Descrição e ilustração:.
Tipo: EUA, Utah, perto de Long Valley, em folhas de Arctostaphylos patula (Ericaceae), out. 2014, M.J. Wingfield (holótipo CBS H-22600, cultura ex-type CPC 25574 = CBS 141290).
Meristemomyces frigidus Isola & Onofri, sp. nov. MycoBank MB829413.
Sinônimo: Meristemomyces frigidus Isola & Onofri, Fungal Diversity 65: 159. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado pelo crescimento meristemático típico e pelo ambiente frio do qual a cepa foi isolada.
Descrição e ilustração:.
Typus: Himalaia, Aconcágua, de rocha (holótipo CBS 136109, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Neodevriesia bulbillosa Egidi & Zucconi, sp. nov. MycoBank MB829414.
Sinônimos: Devriesia bulbillosa Egidi & Zucconi, Fungal Diversity 65: 148. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Neodevriesia bulbillosa (Egidi & Zucconi) Crous, Sydowia 67: 108. 2015. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado devido a grandes estruturas multicelulares elipsoidais presentes em cultura.
Descrição e ilustração:.
Typus: Espanha, Maiorca, Cala Sant Vicenç (holótipo CBS 118285, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Neodevriesia modesta Isola & Zucconi, sp. nov. MycoBank MB829415.
Sinônimos: Devriesia modesta Isola & Zucconi, Fungal Diversity 65: 148. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Neodevriesia modesta (Isola & Zucconi) Crous, Sydowia 67: 108. 2015. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado devido à sua escassa exibição da morfologia de Neodevriesia.
Descrição e ilustração:.
Typus: Itália, Viterbo, Vallerano, Grotta del Salvatore (holótipo CBS 137182, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Neodevriesia sardiniae Isola & de Hoog, sp. nov. MycoBank MB829416.
Sinônimos: Devriesia sardiniae Isola & de Hoog, Fungal Diversity 76: 85. 2015 (2016). Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Neodevriesia sardiniae (Isola & de Hoog) M.M. Wang & L. Cai, Mycologia 109: 972. 2017. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em homenagem à Sardenha, a ilha onde a linhagem foi isolada.
Descrição e ilustração:.
Typus: Itália, Cagliari, (monumento funerário Frau-Carta) no cemitério de Bonaria, isolado de uma cruz de mármore (holótipo CBS 139724, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Neodevriesia simplex Selbmann & Zucconi, sp. nov. MycoBank MB829417.
Sinônimos: Devriesia simplex Selbmann & Zucconi, Fungal Diversity 65: 148. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Neodevriesia simplex (Selbmann & Zucconi) Crous, Sydowia 67: 107. 2015. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado devido a cadeias simples não ramificadas de conídios asseptados.
Descrição e ilustração:.
Typus: Itália, Viterbo, Vallerano, Grotta del Salvatore, de rocha (holótipo CBS 13718, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Oleoguttula Selbmann & de Hoog, gen. nov. MycoBank MB829418.
Sinônimo: Oleoguttula Selbmann & de Hoog, Fungal Diversity 65: 152. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado devido a conídios negros que parecem gotículas de óleo; é um dos pouquíssimos fungos esporulantes que habitam rochas.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Oleoguttula mirabilis Selbmann & de Hoog.
Oleoguttula mirabilis Selbmann & de Hoog, sp. nov. MycoBank MB829419.
Sinônimo: Oleoguttula mirabilis Selbmann & de Hoog, Fungal Diversity 65: 152. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em referência aos conídios negros que lembram gotículas de óleo; sendo um dos poucos fungos esporulantes que habitam rochas, a morfologia é impressionante.
Descrição e ilustração:.
Typus: Antártica, Lachman Crags, de rocha (holótipo CBS 136102, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Paradevriesia compacta Crous, sp. nov. MycoBank MB829327.
Sinônimo: Devriesia compacta de Hoog & Quaedvl., Fungal Diversity 65: 148. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em referência aos conídios densamente compactados, em forma de barril.
Descrição e ilustração:.
Typus: Espanha, Maiorca, Manut II, de rocha (holótipo CBS 118294, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Perusta Egidi & Stielow, gen. nov. MycoBank MB829420.
Sinônimo: Perusta Egidi & Stielow, Fungal Diversity 65: 155. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em referência à coloração da colônia, que não é uniformemente queimada.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Perusta inaequalis Egidi & Stielow.
Perusta inaequalis Egidi & Stielow, sp. nov. MycoBank MB829421.
Sinônimo: Perusta inaequalis Egidi & Stielow, Fungal Diversity 65: 155. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em referência às células semelhantes a conídios que se inflam unilateralmente.
Descrição e ilustração:.
Typus: Espanha, Atazar, de rocha (holótipo CBS 118271, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Petrophila de Hoog & Quaedvl., gen. nov. MycoBank MB829422.
Sinônimo: Petrophila de Hoog & Quaedvl., Fungal Diversity 65: 152. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em referência ao substrato rochoso do qual foi isolado.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Petrophila incerta de Hoog & Quaedvl.
Petrophila incerta de Hoog & Quaedvl., sp. nov. MycoBank MB829423.
Sinônimo: Petrophila incerta de Hoog & Quaedvl., Fungal Diversity 65: 152. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em referência ao substrato rochoso do qual foi isolado.
Descrição e ilustração:.
Typus: Espanha, Maiorca, de rocha (holótipo CBS 118608, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Rachicladosporium alpinum Egidi & Zucconi, sp. nov. MycoBank MB829424.
Sinônimo: Rachicladosporium alpinum Egidi & Zucconi, Fungal Diversity 65: 159. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em referência à cadeia de montanhas da qual a rocha foi coletada.
Descrição e ilustração:.
Typus: Itália, Alpes de Siusi, de rocha (holótipo CBS 136040, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Rachicladosporium inconspicuum de Hoog & Stielow, sp. nov. MycoBank MB829425.
Sinônimo: Rachicladosporium inconspicuum de Hoog & Stielow, Fungal Diversity 65: 162. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: O nome reflete a escassa diferenciação morfológica observada na colônia.
Descrição e ilustração:.
Typus: Itália, Monte Rosa, de rocha (holótipo CBS 136043, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Rachicladosporium mcmurdoi Selbmann & Onofri, sp. nov. MycoBank MB829426.
Sinônimo: Rachicladosporium mcmurdoi Selbmann & Onofri, Fungal Diversity 65: 159. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em homenagem ao vale do qual a rocha foi coletada.
Descrição e ilustração:.
Tipo: Antártida, Victoria Land Meridional, Vales Secos de McMurdo, Promontório Battleship, de rocha (holótipo CBS 119432, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Rachicladosporium monterosanum Isola & Zucconi, sp. nov. MycoBank MB829427.
Sinônimo: Rachicladosporium monterosium Isola & Zucconi, Fungal Diversity 65: 161. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em homenagem à montanha Monte Rosa da qual a rocha foi coletada.
Descrição e ilustração:.
Tipo: Itália, Stolemberg, Monte Rosa, de rocha (holótipo CBS 137178, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Rachicladosporium paucitum Isola & Egidi, sp. nov. MycoBank MB829428.
Sinônimo: Rachicladosporium paucitum Isola & Egidi, Fungal Diversity 65: 162. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado devido à baixa esporulação por fragmentos de hifas.
Descrição e ilustração:.
Tipo: Itália, Monte Rosa, de rocha (holótipo CBS 136041, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Ramimonilia Stielow & Quaedvl., gen. nov. MycoBank MB829429.
Sinônimo: Ramimonilia Stielow & Quaedvl., Fungal Diversity 65: 155. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: O nome reflete a disposição tipicamente em cadeia das hifas.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Ramimonilia apicalis Stielow & Quaedvl.
Ramimonilia apicalis Stielow & Quaedvl., sp. nov. MycoBank MB829430.
Sinônimo: Ramimonilia apicalis Stielow & Quaedvl., Fungal Diversity 65: 155. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: O nome reflete as hifas tipicamente ramificadas com germinação apical.
Descrição e ilustração:.
Tipo: Espanha, Patones, de rocha (holótipo CBS 118327, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Saxophila Selbmann & de Hoog, gen. nov. MycoBank MB829431.
Sinônimo: Saxophila Selbmann & de Hoog, Fungal Diversity 76: 90. 2015 (2016). Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado após o substrato rochoso de onde foi isolado.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Saxophila tyrrhenica Selbmann & de Hoog.
Saxophila tyrrhenica Selbmann & de Hoog, sp. nov. MycoBank MB829432.
Sinônimo: Saxophila tyrrhenica Selbmann & de Hoog, Fungal Diversity 76: 90. 2015 (2016). Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado após a bacia Tirrena, o local do qual a cepa foi isolada.
Descrição e ilustração:.
Tipo: Itália, Cagliari, isolado de pequenos anjos de mármore de um monumento funerário anônimo no cemitério de Bonaria (holótipo CBS 139725, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Sodiomyces A.A. Grum-Grzhim, Debets & Bilanenko, gen. nov. MycoBank MB829354.
Sinônimo: Sodiomyces Grum-Grzhim., Debets & Bilanenko, Persoonia 31: 154. 2013. Nom. inval., Art. 40.1 (Shenzen).
Etimologia: Do inglês soda e do latim mycetes, referindo-se à capacidade do fungo filamentoso crescer em pH e sais ambientais elevados.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Sodiomyces alkalinus Grum-Grzhim., Debets & Bilanenko.
Sodiomyces alkalinus Grum-Grzhim., Debets & Bilanenko, sp. nov. MycoBank MB829355.
Etimologia: Do latim, alcalinus = alcalino.
Descrição e ilustrações: e.
Tipo: Mongólia, área de Choibalsan, solo de soda (pH 10,7) na margem do lago Shar-Burdiyn, 1999, D. Sorokin (holótipo CBS 110278, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos), cultura ex-tipo CBS 110278 = F11 = VKM F-3762.
Sodiomyces alcalophilus (G. Okada) Giraldo López & Crous, comb. nov. MycoBank MB829356.
Basônimo: Acremonium alcalophilum G. Okada, Trans. Mycol. Soc. Japan 34: 173. 1993.
Descrição e ilustrações:.
Tipo: Japão, Pref. Kanagawa, Tsukui-gun, próximo ao Lago Tsukui, de lodo de composto de fezes de porco, 9 Dez. 1984, A. Yoneda (holótipo TNS-F-176428, isótipo CBS H-5163, cultura ex-isótipo CBS 114.92 = JCM 7366).
Sodiomyces magadiensis S.A. Bondarenko, Grum-Grzhim., Debets & Bilanenko, sp. nov. MycoBank MB829359.
Sinônimo: Sodiomyces magadii S.A. Bondarenko, et al., Fungal Diversity 76: 52. 2015 (2016). Nom. inval., Art. 35.1 (Shenzhen).
Etimologia: O nome refere-se ao Lago Magadi no Quênia (África), onde o fungo foi isolado.
Descrição e ilustrações:.
Tipo: Quênia, solo de soda (pH 11) na margem do Lago Magadi, Jan. 2013, S. Bondarenko (holótipo CBS H-21958, cultura ex-tipo MAG2 = CBS 137619 = VKM F-4583).
Sodiomyces tronii S.A. Bondarenko, Grum-Grzhim., Debets & Bilanenko, sp. nov. MycoBank MB829361.
Sinônimo: Sodiomyces tronii S.A. Bondarenko, et al., Fungal Diversity 76: 52. 2015 (2016). Nom. inval., Art. 35.1 (Shenzhen)
Etimologia: O nome refere-se ao sal ‘trona’ (mineral carbonato), que é abundante no Lago Magadi no Quênia (África), onde o fungo foi isolado.
Descrição e ilustrações:.
Tipo: Quênia, solo de soda (pH 11) na margem do Lago Magadi, Jan. 2013, S. Bondarenko (holótipo CBS H-21957, cultura ex-tipo MAG1 = CBS 137618 = VKM F-4582).
Notas: Embora Sodiomyces alkalinus tenha sido redescrito em, todas as espécies do gênero são inválidas. Isso se deve ao fato de que o nome genérico Sodiomyces era inválido por não possuir uma espécie-tipo válida. O gênero e todas as espécies são, portanto, validados aqui.
Vermiconidia Egidi & Onofri, gen. nov. MycoBank MB829433. Sinônimo: Vermiconia Egidi & Onofri, Fungal Diversity 65: 150. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Morfologia das cadeias conidiais reminiscente de vermes.
Descrição e ilustração:.
Espécie-tipo: Vermiconidia foris Egidi & Onofri.
Vermiconidia antarctica Egidi & Selbmann, sp. nov. MycoBank MB829434.
Sinônimo: Vermiconia antarctica Egidi & Selbmann, Fungal Diversity 65: 152. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em homenagem ao continente frio do qual a cepa foi isolada.
Descrição e ilustração:.
Typus: Antártida, Vales Secos de McMurdo, Promontório Battleship, de rocha (holótipo CBS 136107, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Vermiconidia calcicola de Hoog & Onofri, sp. nov. MycoBank MB829435.
Sinônimo: Vermiconia calcicola de Hoog & Onofri, Fungal Diversity 76: 90. 2015 (2016). Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em homenagem ao substrato do qual a cepa ex-tipo foi isolada.
Descrição e ilustração:.
Typus: Itália, Cagliari, isolado do monumento funerário de mármore de Giuseppina Ara no cemitério de Bonaria (holótipo CBS 140080, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Vermiconidia foris Egidi & Onofri, sp. nov. MycoBank MB829436.
Sinônimo: Vermiconia foris Egidi & Onofri, Fungal Diversity 65: 150. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Morfologia de culturas propagantes que lembram vermes extraterrestres.
Descrição e ilustração:.
Typus: Itália, Monte Rosa, de rocha (holótipo CBS 136106, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
Vermiconidia flagrans Selbmann & Isola, sp. nov. MycoBank MB829437.
Sinônimo: Vermiconia flagrans Selbmann & Isola, Fungal Diversity 65: 152. 2014. Nom. inval., Art. 40.7 (Shenzhen).
Etimologia: Nomeado em homenagem à sobrevivência das altas temperaturas de verão predominantes em seu habitat natural.
Descrição e ilustração:.
Typus: Espanha, Maiorca, de rocha (holótipo CBS 118296, cultura e espécime preservados como metabolicamente inativos).
REFERÊNCIAS
Revisão de agentes de eumicetoma de grão negro na ordem Pleosporales
Primeiro relato de Dicyma pulvinata em Epichloe typhina e seu potencial para controle de E. typhina
Fungos patogênicos causando sintomas semelhantes à mancha foliar de Phaeosphaeria em milho no Brasil
Pseudosigmoidea: Um novo gênero para um hifomiceto (ATCC 16660) anteriormente identificado como Sigmoidea prolifera
Novos primers melhoram a delimitação de espécies em Cercospora
Reavaliação de Vermisporium (Amphisphaeriaceae), um gênero de patógenos foliares de eucaliptos
Heleococcum alkalinum, um novo ascomiceto alcalino-tolerante de solos salinos de soda
Isolados endofíticos de Creosphaeria sassafras
Fungos cercosporoides (Mycosphaerellaceae) 3. Espécies em monocotiledôneas (Poaceae, gramíneas verdadeiras)
Filogenia e taxonomia do gênero Tubakia s. lat
Reavaliação de Cryptosporiopsis eucalypti e espécies semelhantes a Cryptosporiopsis ocorrendo em Eucalyptus
Redefinindo endófitos comuns e patógenos de plantas em Neofabraea, Pezicula e gêneros relacionados
Resolvendo o enigma Phoma
Petriella sordida
Mycosphaerella spp. e seus anamorfos associados a doenças de mancha foliar de Eucalyptus
Espécies de Cercospora e fungos semelhantes ocorrendo na África do Sul
Linhagens filogenéticas em Pseudocercospora
Filogenia e taxonomia de gêneros obscuros de microfungos
MycoBank: uma iniciativa online para lançar a micologia no século XXI
Allelochaeta (Sporocadaceae): perda e ganho de pigmentação
Fungal Planet: folhas de descrição: 785–867
Microfungos de Eucalyptus conhecidos de cultura. 3. Eucasphaeria e Sympoventuria gêneros novos, e novas espécies de Furcaspora, Harknessia, Heteroconium e Phacidiella
Linhagens filogenéticas nos Capnodiales
Fungos novos e interessantes. 1
Fungal Planet: Folhas de Descrição: 214–280
Fungal Planet: folhas de descrição: 625–715
Fungal Planet: Folhas de Descrição: 371–399
Mycosphaerella nubilosa um sinônimo de M. molleriana
Fungal Planet: folhas de descrição: 400–468
Reavaliação sistemática de espécies em Phoma seção Paraphoma, Pyrenochaeta e Pleurophoma
Redistribuição de anamorfos semelhantes a Phoma em Pleosporales
Rhinocladiella e gêneros aliados
Sinonímia de Hansfordia pulvinata (Berk. & Curt.) Hughes
Pseudosigmoidea ibarakiensis sp. nov., um fungo endofítico septado escuro de uma floresta de Cedro em Ibaraki, Japão
Filogenia e taxonomia de fungos negros meristemáticos que habitam rochas nos Dothideomycetes com base em filogenias de múltiplos loci
Hifomicetos Dematiáceos
Mais Hifomicetos Dematiáceos
Microfungos em Plantas Terrestres - Um Manual de Identificação
Famílias e gêneros de fungos diaportáceos associados a cancro e declínio de hospedeiros arbóreos
Estudos revisionais nas Coryneliaceae. II. O gênero Caliciopsis
Uma chave para as espécies não liquenícolas do gênero Capronia (Herpotrichiellaceae)
Três novas espécies de Cyphellophora (Chaetothyriales) associadas a Sooty Blotch e Flyspeck
Diaporthe é parafilético
Dentro de Plectosphaerellaceae
Ocorrência de espécies de Ochroconis e Verruconis em espécimes clínicos dos Estados Unidos
Diaporthe: um gênero de fungos endofíticos, sapróbios e fitopatogênicos
Etiologia da mancha foliar de phaeosphaeria do milho
Conceitos de espécie em Cercospora: identificando as ervas daninhas entre as rosas
Sodiomyces alkalinus, um novo ascomiceto holomórfico alcalifílico dentro das Plectosphaerellaceae
Sobre a diversidade de fungos de solos de soda
Doenças emergentes de citros na Europa causadas por espécies de Diaporthe
Primeiro relato de Phyllosticta citricarpa e descrição de duas novas espécies, P. paracapitalensis e P. paracitricarpa, de citros na Europa
Uma nova espécie liquenícola de Capronia (Ascomycota, Herpotrichiellaceae) com uma chave para as espécies liquenícolas conhecidas do gênero
A Declaração de Amsterdã sobre Nomenclatura Fúngica
Filogenia de microfungos sapróbios do Sul da Europa
Neocordana gen. nov., o organismo causal da mancha foliar de Cordana da banana
Reavaliação taxonômica e filogenética de Microdochium, Monographella e Idriella
Fungos negros extremotolerantes que habitam rochas de sítios monumentais italianos
Um relato preliminar das Cucurbitariaceae
Geneious Basic: uma plataforma de software de desktop integrada e extensível para organização e análise de dados de sequência
Resolvendo a natureza polifilética de Pyricularia (Pyriculariaceae)
Parascedosporium e seus parentes: filogenia e tendências ecológicas
Hiperdiversidade genérica em Stachybotriaceae
Gêneros de fungos fitopatogênicos: GOPHY 2
Fatores que afetam o controle biológico da mancha foliar de Cercosporidium em amendoim por Dicyma pulvinata
Acremonium alcalophilum, um novo hifomiceto celulolítico alcalofílico
Kirramyces phormii comb. nov. de folhas de Phormium
Caliciopsis pleomorpha sp. nov. (Ascomycota: Coryneliales) causando uma grave doença de cancro em Eucalyptus cladocalyx e outras espécies de eucalipto na Austrália
Hansfordia pulvinata, micoparasita destruidor do Cladosporium fulvum
Resolvendo o status filogenético e taxonômico de gêneros teleomórficos de esporos escuros em Botryosphaeriaceae
Introduzindo o Conceito de Espécie Consolidado para resolver espécies em Teratosphaeriaceae
A conexão de Dothidotthia aspera (Botryosphaeriaceae) com um fungo anamórfico hifomiceto, Thyrostroma negundinis
Fichas Micológicas. Micromicetos da floresta de Campigna. II Contributo
Alguns Hifomicetos Dematiáceos de serrapilheira de maquis mediterrâneo
Dos túneis às copas das árvores: novas linhagens de leveduras negras de biofilme no sistema de metrô de Estocolmo e seus parentes entre fungos associados a formigas em Chaetothyriales
MrBayes 3.2: Inferência filogenética Bayesiana eficiente e escolha de modelo em um grande espaço de modelos
Nomes recomendados para gêneros pleomórficos em Dothideomycetes
Uma nova espécie do gênero oligotrófico Ochroconis (Sympoventuriaceae)
Devriesia, um novo gênero de hifomiceto para acomodar fungos termorresistentes semelhantes a Cladosporium
Famílias de Diaporthales com base em evidências morfológicas e filogenéticas
Sphaeropsis sapinea e Botryosphaeria dothidea endofíticos em Pinus spp. e Eucalyptus spp. na África do Sul
Microfungos de Eucalyptus conhecidos em cultura. 2. Alysidiella, Fusculina e Phlogicylindrium gêneros novos, com notas sobre alguns outros táxons pouco conhecidos
Revisão de Massarineae (Pleosporales, Dothideomycetes)
Taxonomia e filogenia de Juncaceicola gen. nov. (Phaeosphaeriaceae, Pleosporinae, Pleosporales)
Rumo a uma classificação natural e árvore de suporte para Lophiostomataceae, Floricolaceae e Amorosiaceae fam. nov.
Sistemática molecular de Helicoma, Helicomyces e Helicosporium e seus teleomorfos inferida a partir de sequências de rDNA
Endophragmia alternata sp. nov. e outros hifomicetos em folhas de Pinus no Japão
Insights sobre o gênero Diaporthe: delimitação filogenética de espécies no complexo de espécies D. eres
Taxonomia de membros selecionados do gênero de ascomiceto Capronia com notas sobre conexões anamorfo-teleomorfo
Dothideomycetes coelomicetos com ênfase nas famílias Cucurbitariaceae e Didymellaceae
Caracterização e patogenicidade de Cylindrocladiella spp. associadas a sintomas de podridão de raízes e estacas de videiras em viveiros
Nem tudo que reluz é Ramularia
Mycosphaerellaceae – caos ou clareza?
Revisão filogenética de Camarosporium (Pleosporineae, Dothideomycetes) e gêneros afins
Notas sobre diversidade fúngica 709–839: contribuições taxonômicas e filogenéticas para táxons fúngicos com ênfase em fungos em Rosaceae
Um fungo, um nome promove fitopatologia progressiva
Espécies de Phyllosticta associadas à doença de sarda da banana
Um algoritmo ganancioso para alinhamento de sequências de DNA
Caracterização polifásica de quatro novas espécies de Phyllosticta patogênicas de plantas da China, Japão e Estados Unidos
Filograma de consenso (regra da maioria de 50%) obtido a partir de uma análise bayesiana do alinhamento de Dothideomycetes. Probabilidades posteriores bayesianas (PP) >0,84 são mostradas nos nós e linhas espessadas representam nós com PP = 1,00. A barra de escala representa as mudanças esperadas por sítio. Famílias e ordens são indicadas com blocos coloridos à direita da árvore. Números de acesso do GenBank e/ou números de acesso de cultura são indicados atrás dos nomes das espécies. A árvore foi enraizada em Helotium subcorticale (GenBank MH869740.1) e as novidades tratadas na seção de Taxonomia estão indicadas em negrito.
Filograma de consenso (regra da maioria de 50%) obtido a partir de uma análise bayesiana do alinhamento de Eurotiomycetes. Probabilidades posteriores bayesianas (PP) >0,84 são mostradas nos nós e linhas espessadas representam nós com PP = 1,00. A barra de escala representa as mudanças esperadas por sítio. Famílias e ordens são indicadas com blocos coloridos à direita da árvore. Números de acesso do GenBank e/ou números de acesso de cultura são indicados atrás dos nomes das espécies. A árvore foi enraizada em Saccharata proteae (GenBank EU552145.1) e as novidades tratadas na seção de Taxonomia estão indicadas em negrito.
Filograma de consenso (regra da maioria de 50%) obtido a partir de uma análise bayesiana do alinhamento de Lecanoromycetes e Leotiomycetes. Probabilidades posteriores bayesianas (PP) >0,84 são mostradas nos nós e linhas espessadas representam nós com PP = 1,00. A barra de escala representa as mudanças esperadas por sítio. Famílias, ordens e classes são indicadas com blocos coloridos à direita da árvore. Números de acesso do GenBank e/ou números de acesso de cultura são indicados atrás dos nomes das espécies. A árvore foi enraizada em Saccharata proteae (GenBank EU552145.1) e as novidades tratadas na seção de Taxonomia estão indicadas em negrito.
Filograma de consenso (regra da maioria de 50%) obtido a partir de uma análise bayesiana do alinhamento de Sordariomycetes. Probabilidades posteriores bayesianas (PP) >0,84 são mostradas nos nós e linhas espessadas representam nós com PP = 1,00. A barra de escala representa as mudanças esperadas por sítio. Famílias e ordens são indicadas com blocos coloridos à direita da árvore. Números de acesso do GenBank e/ou números de acesso de cultura são indicados atrás dos nomes das espécies. A árvore foi enraizada em Saccharata proteae (GenBank EU552145.1) e as novidades tratadas na seção de Taxonomia estão indicadas em negrito.
Amycosphaerella africana (CPC 32782). A. Ascomas formando em SNA. B, C. Ascos e ascósporos. Barras de escala: A = 90 µm, B, C = 10 µm.
Bacillicladium clematidis (CPC 33882). A. Colônia em OA. B, C. Células conidiogênicas dando origem a conídios. D. Conídios em brotamento. Barras de escala = 10 µm.
Beltrania rhombica (CPC 31775). A–D. Conidióforos, células separadoras e conídios. Barras de escala = 10 µm.
Brevistachys lateralis (CPC 33958). A–G. Conidióforos com fiálides, formando cadeias de conídios. H. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Cercospora gomphrenigena (CPC 32470). A. Mancha foliar. B–E. Conidióforos com loci conidiais. F. Conídio. Barras de escala: A = 4 mm, B–F = 10 µm.
Cladoriella xanthorrhoeae (CPC 32609). A. Colônias em SNA. B–F. Conidióforos dando origem a cadeias de conídios ramificadas. Barras de escala = 10 µm.
Creosphaeria sassafras (CPC 33410). A–C. Conidióforos com loci conidiais. D. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Cylindrocladiella peruviana (CPC 33527). A. Conidióforo subverticilado. B, C. Conidióforos penicilados. D. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Cyphellophora clematidis (CPC 33880). A–C. Hifas com aglomerados de células conidiogênicas. D. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Diaporthe anacardii (CPC 33074). A. Conidiomas em PDA. B, C. Células conidiogênicas. D. Conídios. Barras de escala: A = 250 µm, B–D = 10 µm.
Diaporthe eres (CPC 34055). A. Conidioma em OA. B, C. Conidióforos com células conidiogênicas. D. Conídios. Barras de escala: A = 400 µm, B–D = 10 µm.
Dichotomophthora basellae (CPC 33044). A. Conidióforos em SNA. B. Microconídios. C–F. Macroconídios. Barras de escala = 10 µm.
Exophiala abietophila (CPC 34580). A. Colônia em SNA. B, C. Loci conidiogênicos em hifas. D, E. Conídios em brotamento. Barras de escala = 10 µm.
Exophiala lignicola (CPC 32464). A. Conidióforos em SNA. B, C. Conidióforos penicilados. D. Conídios. Barras de escala: A = 20 µm, B–D = 10 µm.
Fuscostagonospora banksiae (CPC 31724). A. Parede conidiomatosa dando origem a células conidiogênicas. B, C. Células conidiogênicas. D. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Gaeumannomycella caricicola (CPC 33925). A–C. Ascomas periteciais imersos no substrato (folhas de gramíneas). D. Peritécios. E. Peritécios com ascas. F. Ascósporos. Barras de escala. A–E = 50 µm, F = 10 µm.
A primeira de cinco árvores igualmente mais parcimoniosas obtidas a partir de uma análise filogenética do alinhamento ITS de Hansfordia (20 linhagens incluindo o grupo externo; 477 caracteres analisados: 337 constantes, 93 variáveis e não informativos para parcimônia e 47 informativos para parcimônia). A árvore foi enraizada em Dicyma funiculosa (GenBank NR_132072.1) e a barra de escala indica o número de mudanças. Valores de suporte de bootstrap superiores a 49% são mostrados nos nós e os clados das espécies são destacados com caixas coloridas. Os nomes das espécies são indicados à direita da árvore. Números das linhagens, seguidos pelas fontes entre parênteses, substrato/fonte e país de origem são indicados para cada sequência. Ramos presentes na árvore de consenso estrito são espessados. O comprimento do ramo mais basal foi encurtado para facilitar o layout. Estatísticas da árvore: TL = 159, CI = 0,975, RI = 0,986, RC = 0,961.
Hansfordia pruni (CBS 194.56). A–E. Conidióforos com células conidiogênicas. F. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Hansfordia pulvinata (CPC 32119). A. Conidióforo. B, C. Células conidiogênicas. D. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Hypsotheca pleomorpha (CPC 32144). A. Conidioma formando-se em BDA. B. Conidioma com ostíolo. C, D. Células conidiogênicas. E. Conídios. Barras de escala: A = 200 µm, B = 50 µm, C–E = 10 µm.
Jeremyomyces labinae (CPC 33154). A. Ascomas em tecido hospedeiro. B. Conidioma em cultura. C–E. Ascos. F. Ascósporos com bainha. Barras de escala: A, B = 200 µm, C–F = 10 µm.
Macgarvieomyces luzulae (CPC 34292). A. Conidióforo em ANA. B–D. Conidióforos. E. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Microdochium rhopalostylidis (CPC 34449). A. Esporodóquios em ANA. B–D. Células conidiogênicas dando origem a conídios. Barras de escala = 10 µm.
Neocordana malayensis (CPC 32837). A. Conidióforos em ANA. B–E. Conidióforos com loci conidiogênicos. F. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Neocucurbitaria prunicola (CPC 33709). A, B. Conidiomas em ANA. C, D. Células conidiogênicas. E. Conídios. Barras de escala: A, B = 200 µm, C–E = 10 µm.
Neocucurbitaria salicis-albae (CPC 33162). A. Conidiomas imersos em tecido hospedeiro. B, C. Conidiomas em cultura. D, E. Células conidiogênicas. F. Conídios. Barras de escala: B, C = 120 µm, C–F = 10 µm.
Neodevriesia metrosideri (CPC 32786). A. Colônia em BDA. B–D. Conidióforos dando origem a cadeias conidiais ramificadas. Barras de escala = 10 µm.
Neodothidotthia negundinicola (CPC 34071). A. Esporodóquios em ANA. B–E. Células conidiogênicas dando origem a conídios. F. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Neohelicomyces deschampsiae (CPC 33686). A. Conidióforos em ANA. B, C. Conidióforos dando origem a conídios. D. Conídios. Barras de escala: A = 20 µm, B–D = 10 µm.
Neomedicopsis prunicola (CPC 33711). A. Conidiomas em AA. B, C. Células conidiogênicas. D, E. Conídios. Barras de escala: A = 300 µm, B–E = 10 µm.
Neophaeoappendicospora leucaenae (CPC 27240). A. Conidiomas em AEA. B, C. Células conidiogênicas dando origem a conídios. D. Conídios. E. Ascomas em tecido hospedeiro. F. Pseudoparáfises. G, H. Ascos. I. Ascósporos. Barras de escala = 10 µm.
Ochroconis musae (CPC 33947). A–D. Conidióforos dando origem a conídios. Barras de escala = 10 µm.
Pararamichloridium livistonae (CPC 32152). A–C. Conidióforos. D. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Pararoussoella juglandicola (CPC 33400). A. Conidioma em ANA. B. Células conidiogênicas. C. Conídios. Barras de escala: A = 300 µm, B, C = 10 µm.
Petriella sordida (CPC 32460). A. Sinemas em AA. B, C. Conidióforos com células conidiogênicas. D. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Pezicula eucalyptigena (CPC 32129). A. Conidioma em ANA. B, C. Células conidiogênicas. D. Microconídios. E. Macroconídios. Barras de escala: A = 250 µm, B–E = 10 µm.
Phaeoseptoriella zeae (CPC 33064). A. Conidiomas em AA. B, C. Células conidiogênicas. D. Conídios. Barras de escala: A = 250 µm, B–D = 10 µm.
Phlogicylindrium dunnii (CPC 31818). A. Conidioma eustromático em BDA. B, C. Conidióforos. D. Micro e macroconídios. Barras de escala: A = 200 µm, B–D = 10 µm.
Phyllosticta austroafricana (CPC 31920). A. Conidiomas em MEA. B. Células conidiogênicas. C. Conídios. D. Espermácias. Barras de escala: A = 200 µm, B–D = 10 µm.
Phyllosticta hagahagaensis (CPC 32799). A. Conidioma em OA. B, C. Células conidiogênicas. D. Conídios. Barras de escala: A = 300 µm, B–D = 10 µm.
Piniphoma wesendahlina (CPC 33693). A. Conidiomas em PNA. B. Conidioma. C, D. Células conidiogênicas. E. Conídios. Barras de escala: A, B = 100 µm, C–E = 10 µm.
Pseudocercospora hakeae (CPC 32100). A. Mancha foliar. B. Estroma. C. Células conidiogênicas. D. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Pseudoconiothyrium broussonetiae (CPC 33570). A. Conidiomas em PDA. B, C. Células conidiogênicas. D. Conídios. Barras de escala: A = 300 µm, B–D = 10 µm.
Pseudophaeophleospora phormii (CPC 32742). A, B. Células conidiogênicas. C. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Pseudosigmoidea alnicola (CPC 33776). A–E. Células conidiogênicas dando origem a conídios. F, G. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Pseudoteratosphaeria africana (CPC 33144). A. Mancha foliar. B–E. Ascos e ascósporos. Barras de escala: A = 5 mm, B–E = 10 µm.
Porodiplodia vitis (CPC 31642). A. Conidiomas em OA. B–E. Células conidiogênicas dando origem a conídios. F. Conídios. Barras de escala: A = 300 µm, B–F = 10 µm.
Selenodriella fertilis (CPC 32663). A. Colônia em SNA. B. Células conidiogênicas. C–E. Conidióforos. F. Conídios. G. Clamidósporos. Barras de escala: A = 100 µm, B–G = 10 µm.
Stagonospora pseudoperfecta (CPC 33138). A–C. Células conidiogênicas. D. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Árvore filogenética RAxML obtida a partir de uma análise filogenética do alinhamento de ITS, LSU, rpb2 e tef1 de Sympodiella (9 linhagens incluindo grupo externo; 4014 caracteres analisados: 699 de ITS, 886 de LSU, 921 de rpb2 e 1508 de tef1). A árvore foi enraizada em Pseudoanungitea variabilis CBS 132716 e Septonema crispulum CBS 735.96 e a barra de escala indica o número de alterações. Valores de suporte bootstrap superiores a 70% e probabilidades posteriores bayesianas superiores a 0,95 são mostrados nos nós e os clados das espécies são destacados com caixas coloridas. Os nomes das espécies são indicados à direita da árvore. Os números das linhagens são seguidos pelo substrato/fonte e o país de origem é indicado para cada linhagem.
Sympodiella acicola (CBS H-1620 - Agulhas de Pinus). A–L.
Morfos assexuados de Sympodiella. A–G. Conidióforos, células conidiogênicas e conídios. H–L. Conídios. M–V. Morfos sinassexuais semelhantes a Repetophragma. M–S. Conidióforos e conídios. T–V. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Sympodiella acicola (CBS 487.82 em OA). A–E, G, H. Conidióforos, células conidiogênicas e conídios (setas mostrando proliferações percorrentes). F, I–K. Conídios. Barras de escala: A, B = 20 µm, C–K = 10 µm.
Sympodiella alternata (CBS 326.69 em OA). A–C. Conidióforos com proliferações percorrentes. D, E. Conidióforos com proliferações simpodiais. F. Conidióforo com conídios laterais. G–I. Conidióforos dando origem a conídios. J–P. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Sympodiella quercina (HPC 2106 - folha de Quercus). A–G. Morfo sinassexuado semelhante a Repetophragma. A–C, E, F. Conidióforos e conídios. D. Rede de hifas marrons no substrato. G. Conídios. H. Conidióforos e conídios semelhantes a Repetophragma e Sympodiella. I–M. Morfo assexuado de Sympodiella. I–L. Conidióforos e conídios. M. Conídios. Barras de escala D, E, H, I = 20 µm, demais = 10 µm.
Sympodiella quercina (CPC 33903). A. Colônia em SNA. B–D. Conidióforos dando origem a conídios. Barras de escala: A = 20 mm, B–D = 10 mm.
Sympodiella quercina (CBS 987.70 em SNA). A–D. Conidióforos dando origem a conídios. E, F. Células conidiogênicas. G–K. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Sympoventuria regnans (CPC 31820). A–C. Conidióforos. D. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Tubakia suttoniana (CPC 32745). A. Iniciais conidiomatais se desenvolvendo em SNA. B, C. Células conidiogênicas. D. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Turquoiseomyces eucalypti (CPC 34399). A. Conidiomas em cultura em OA (observar cor). B, C. Células conidiogênicas dando origem a conídios. D. Conídios. Barras de escala: A = 300 µm, B–D = 10 µm.
Typhicola typharum (CPC 33271). A. Ascomas em tecido hospedeiro. B–E. Ascos. F. Ascósporos. Barras de escala: A = 150 µm, B–F = 10 µm.
Wojnowiciella dactylidis (CPC 32741). A. Conidioma em SNA. B, C. Células conidiogênicas. D. Conídios. Barras de escala: A = 150 µm, B–D = 10 µm.
Zasmidium hakeicola (CPC 32703). A. Conidióforo dando origem a conídio. B–E. Células conidiogênicas e loci conidiais. F. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Zygosporium pseudogibbum (CPC 32120). A–D. Conidióforos dando origem a conídios. E. Conídios. Barras de escala = 10 µm.
Detalhes da coleta e números de acesso do GenBank dos isolados considerados neste estudo.
Espécie Localidade Substrato Número(s) de acesso da cultura1 Número de acesso do GenBank2 ITS, LSU, act cmdA, gapdh, his3 rpb2, tef1, tub2 Allelochaeta falcata Austrália Eucalyptus alligatrix CPC 13578 = CBS 131117, ex-epítipo JN871204.1, JN871213.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Amycosphaerella africana Nova Zelândia Metrosideros excelsa CPC 32782 = CBS 144635 = T16_03926C MK442569.1, MK442511.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, MK442688.1, MK442725.1 Bacillicladium clematidis, sp. nov. Áustria Clematis vitalba CPC 33882 = CBS 145035, ex-tipo MK442570.1, MK442512.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, MK442726.1 Beltrania rhombica Chile Eucalyptus urophylla CPC 31775 = CBS 144521 MK442571.1, MK442513.1,‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Brevistachys lateralis Tailândia Musa sp. CPC 33958 = CBS 145062 MK442572.1, MK442514.1, ‒ MK442649.1, ‒, ‒ MK442661.1, MK442689.1, MK442727.1 Cercospora gomphrenigena, sp. nov. África do Sul Gomphrena globosa CPC 32470 = CBS 144613, ex-tipo MK442573.1, MK442515.1, ‒ MK442650.1, ‒, MK442658.1 ‒, MK442690.1, MK442728.1 Cladoriella xanthorrhoeae Austrália Xanthorrhoea sp. CPC 32609 = CBS 144523 MK442574.1, MK442516.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Creosphaeria sassafras Espanha Laurus nobilis CPC 33410 = CBS 144984 MK442575.1, MK442517.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Cylindrocladiella peruviana África do Sul Pelargonium sp. CPC 33527 = CBS 145053 = SPXX MK442576.1, MK442518.1, ‒ ‒, ‒, MK442659.1 MK442662.1, MK442691.1, MK442729.1 Cyphellophora clematidis, sp. nov. Áustria Clematis vitalba CPC 33880 = CBS 144983, ex-tipo MK442577.1, MK442519.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, MK442730.1 Diaporthe anacardii África do Sul Serapilheira não identificada CPC 33074 = CBS 144610 MK442578.1, MK442520.1, ‒ MK442651.1, ‒, ‒ ‒, MK442692.1, ‒ Diaporthe eres Países Baixos Lactuca sativa CPC 34055 = CBS 145040 MK442579.1, MK442521.1, MK442634.1 MK442652.1, ‒, ‒ MK442663.1, MK442693.1, MK442731.1 Dichotomophthora basellae Tailândia Planta hospedeira não identificada CPC 33044 = CBS 145050 MK442580.1, MK442522.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442664.1, ‒, ‒ Exophiala abietophila, sp. nov. Noruega Abies alba CPC 34580 = CBS 145038, ex-tipo MK442581.1, MK442523.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Exophiala lignicola, sp. nov. Ucrânia cf. Quercus sp. CPC 32464 = CBS 144622, ex-tipo MK442582.1, MK442524.1, ‒ MK442653.1, ‒, ‒ ‒, MK442694.1, ‒ Fuscostagonospora banksiae, sp. nov. Austrália Banksia sp. CPC 31724 = CBS 144621, ex-tipo MK442583.1, MK442525.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Gaeumannomycella caricicola, sp.
nov. Alemanha Carex remota CPC 33925 = CBS 145041, ex-tipo MK442584.1, MK442526.1, ‒ ‒, ‒, MK442660.1 ‒, ‒, MK442732.1 Hansfordia pruni, sp. nov. Itália Prunus persica CBS 194.56 = IMI 146912, ex-tipo MK442585.1, MH869122.1, KU760903.1 ‒, ‒, ‒ KU684307.1, ‒, ‒ Hansfordia pulvinata Itália Cercospora unamunoi em Capsicum annuum CBS 134.62 = IMI 146913 MK442586.1, MH869699.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Austrália Macrozamia miquelii CPC 32119 = CBS 144422 MK442587.1, MK442527.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Hypsotheca maxima, comb. nov. Brasil Niphidium crassifolium CPC 24674 = COAD 1983, ex-epítipo KX891229.1, KX891228.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Hypsotheca nigra, comb. nov. Espanha Líquens epífitos crescendo na casca de azinheira MA 18191 ‒, KP144011.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Hypsotheca pleomorpha, comb. nov. Austrália Eucalyptus piperita CPC 32144 = CBS 144636 MK442588.1, MK442528.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Jeremyomyces labinae, gen. et sp. nov. Alemanha Salix alba CPC 33154 = CBS 144617, ex-tipo MK442589.1, MK442529.1, ‒ MK442654.1, ‒, ‒ MK442665.1, MK442695.1, MK442733.1 Macgarvieomyces luzulae Ucrânia Luzula sylvatica CPC 34292 = CBS 145042 MK442591.1, MK442531.1, MK442635.1 ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Microdochium rhopalostylidis, sp. nov. Nova Zelândia Rhopalostylis sapida CPC 34449 = CBS 145125, ex-tipo MK442592.1, MK442532.1, MK442636.1 MK442655.1, ‒, ‒ MK442667.1, ‒, MK442735.1 Neocordana malayensis, sp. nov. Malásia Musa sp. CPC 32837 = CBS 144604, ex-tipo MK442593.1, MK442533.1, MK442637.1 ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, MK442736.1 Neocucurbitaria prunicola, sp. nov. Ucrânia Prunus padus CPC 33709 = CBS 145033, ex-tipo MK442594.1, MK442534.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442668.1, ‒, MK442737.1 Neocucurbitaria salicis-albae, sp. nov. Alemanha Salix alba CPC 33162 = CBS 144611, ex-tipo MK442595.1, MK442535.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442669.1, ‒, MK442738.1 Neodevriesia metrosideri Nova Zelândia Metrosideros excelsa CPC 32786 = CBS 144638 MK442596.1, MK442536.1, MK442638.1 ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, MK442739.1 Neodothidotthia negundinicola, gen. et sp. nov. Ucrânia Acer negundo CPC 34071 = CBS 145039, ex-tipo MK442597.1, MK442537.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, MK442697.1, ‒ Neodothidotthia negundinis, comb.
nov. EUA Fendlera rupicola CPC 12928 = CBS 119686 MK442598.1, EU673272.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ EUA Euonymus alatus CPC 12930 = CBS 119688 MK442599.1, EU673274.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ EUA Acer negundo CPC 12932 = CBS 119690 MK442600.1, EU673275.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ EUA Acer negundo CPC 12933 = CBS 119691 MK442601.1, EU673276.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Neohelicomyces deschampsiae, sp. nov. Alemanha Deschampsia cespitosa CPC 33686 = CBS 145029, ex-tipo MK442602.1, MK442538.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Neomedicopsis prunicola, gênero et sp. nov. Ucrânia Prunus padus CPC 33711 = CBS 145031, ex-tipo MK442603.1, MK442539.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442670.1, ‒, ‒ Neophaeoappendicospora leucaenae, gênero et sp. nov. Reunião Leucaena leucocephala CPC 27240, ex-tipo MK442604.1, MK442540.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Ochroconis musae Tailândia Persea americana CPC 33947 = CBS 145061 MK442605.1, MK442541.1, MK442639.1 ‒, ‒, ‒ ‒, MK442698.1, ‒ Paradevriesia americana, gênero et comb. nov. EUA Ar CBS 117726 = CPC 5121 = ATCC 96545, ex-tipo MH863026.1, EU040227.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Paradevriesia compacta, sp. nov. Mallorca Rocha CBS 118294 = TRN 111 = dH 14587, ex-tipo GU323967.1, GU323967.1, ‒ ‒, ‒, ‒ KF310095.1, ‒, KF546761.1 Paradevriesia pseudoamericana, comb. nov. Alemanha Malus domestica CPC 16174 = CBS 126270, ex-tipo GU570527.1, GU570544.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, HM177416.1, ‒ Pararamichloridium livistonae Austrália Livistona australis CPC 32152 = CBS 144522, ex-tipo MK442606.1, MK442542.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Pararoussoella juglandicola, sp. nov. Alemanha Juglans regia CPC 33400 = CBS 145037, ex-tipo MK442607.1, MK442543.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442671.1, MK442699.1, ‒ Pararoussoella mukdahanensis, comb. nov. Tailândia Bambu, colmos mortos MFLUCC 11-0201, ex-tipo KU940129.1, KU863118.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Petriella sordida Ucrânia Luzula sp. CPC 32460 = CBS 144612 MK442608.1, MK442544.1, ‒ MK442656.1, ‒, ‒ ‒, MK442700.1, MK442740.1 Ucrânia Luzula sp. CPC 32461 = CBS 145121 MK442609.1, MK442545.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442672.1, MK442701.1, ‒ Pezicula eucalyptigena, sp. nov. África do Sul Eucalyptus sp. CPC 32129 = CBS 144637, ex-tipo MK442610.1, MK442546.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442673.1, ‒, ‒ Phaeoseptoriella zeae, gênero et sp. nov. África do Sul Zea mays CPC 33064 = CBS 144614, ex-tipo MK442611.1, MK442547.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442674.1, MK442702.1, MK442741.1 Phlogicylindrium dunnii, sp.
nov. Austrália Eucalyptus dunnii CPC 31818 = CBS 144620, ex-tipo MK442612.1, MK442548.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442675.1, MK442703.1, ‒ Phyllosticta austroafricana, sp. nov. África do Sul Manchas foliares de hospedeiro arbóreo decíduo não identificado CPC 31920 = CBS 144593, ex-tipo MK442613.1, MK442549.1, MK442640.1 ‒, ‒, ‒ ‒, MK442704.1, ‒ Phyllosticta hagahagaensis, sp. nov. África do Sul Carissa bispinosa CPC 32799 = CBS 144592, ex-tipo MK442614.1, MK442550.1, MK442641.1 ‒, MK442657.1, ‒ ‒, MK442705.1, ‒ Piniphoma wesendahlina, gen. et sp. nov. Alemanha Pinus sylvestris CPC 33693 = CBS 145032, ex-tipo MK442615.1, MK442551.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442676.1, MK442706.1, MK442742.1 Porodiplodia vitis, sp. nov. EUA Vitis vinifera CPC 31642 = CBS 144634, ex-tipo MK442616.1, MK442552.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, MK442707.1, ‒ Pseudoanungitea variabilis Espanha Serrapilheira CBS 132716 = FMR 11934, ex-tipo KY853424.1, KY853484.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442678.1, MK442710.1, ‒ Pseudocercospora hakeae Austrália Hakea sp. CPC 32100 = CBS 144520 MK442617.1, MK442553.1, MK442642.1 ‒, ‒, ‒ MK442677.1, MK442708.1, MK442743.1 Pseudoconiothyrium broussonetiae, gen. et sp. nov. Itália Broussonetia papyrifera CPC 33570 = CBS 145036, ex-tipo MK442618.1, MK442554.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, MK442709.1, ‒ Pseudophaeophleospora phormii, comb. nov. Nova Zelândia Phormium tenax CPC 32742 = CBS 144606 = T16_03297D, ex-epítipo MK442619.1, MK442555.1, MK442643.1 ‒, ‒, ‒ ‒, MK442711.1, ‒ Pseudosigmoidea alnicola, sp. nov. Alemanha Alnus glutinosa CPC 33776 = CBS 145034, ex-tipo MK442620.1, MK442556.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Pseudoteratosphaeria africana, sp.
nov. Angola Mancha foliar em hospedeiro não identificado CPC 33072 = CBS 144597 MK442621.1, MK442557.1, MK442644.1 ‒, ‒, ‒ ‒, MK442712.1, MK442744.1 Angola Mancha foliar em hospedeiro não identificado CPC 33144 = CBS 144595, extype MK442622.1, MK442558.1, MK442645.1 ‒, ‒, ‒ ‒, MK442713.1, MK442745.1 Angola Mancha foliar em hospedeiro não identificado CPC 33145 = CBS 144596 MK442623.1, MK442559.1, MK442646.1 ‒, ‒, ‒ ‒, MK442714.1, MK442746.1 Selenodriella fertilis Australia Eucalyptus sp. CPC 32663 = CBS 144589 MK442624.1, MK442560.1,‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Septonema crispulum Itália Pinus pinea CBS 735.96, ex-isotype MH862607.1, MH874232.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442679.1, ‒, ‒ Stagonospora pseudoperfecta Alemanha Typha sp. CPC 33138 = CBS 144607 MK442625.1, MK442561.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, MK442715.1, MK442747.1 Sympodiella acicola Países Baixos Pinus sylvestris CBS 425.76 KY853467.1, KY853529.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442680.1, MK442716.1, ‒ Países Baixos Pinus sylvestris CBS 487.82, ex-epitype KY853468.1, KY853530.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442681.1, MK442717.1, ‒ Sympodiella alternata, comb. nov. Japão Pinus densifolia IFO 8933 = CBS 326.69, ex-type MK442626.1, MH871053.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442682.1, MK442718.1, ‒ ‒ ‒ HKUCC 10828 = NN43193 ‒, DQ408574.1, ‒ ‒, ‒, ‒ DQ435078.1, ‒, ‒ Sympodiella goidanichii, comb. nov. Itália Fagus sylvatica CBS 136.58, ex-type MH857722.1, MH869262.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, MK442719.1, ‒ Sympodiella quercina, sp. nov. Reino Unido Betula sp. CBS 987.70 MH860019.1, MH871803.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442683.1, MK442720.1, ‒ Alemanha Quercus robur CPC 33903 = CBS 145028, extype MK442627.1, MK442562.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442684.1, MK442721.1, ‒ Sympoventuria regnans Australia Eucalyptus pauciflora CPC 31820 = CBS 144605 MK442628.1, MK442563.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, MK442722.1, MK442748.1 Tubakia suttoniana Nova Zelândia Quercus sp. CPC 32745 = CBS 144591 = T16_01981A MK442629.1, MK442564.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442685.1, MK442723.1, MK442749.1 Turquoiseomyces eucalypti, gen. et sp. nov. Australia Eucalyptus leptophylla CPC 34399 = CBS 145126, extype MK442630.1, MK442565.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442686.1, ‒, MK442750.1 Typhicola typharum, gen. et comb. nov. Alemanha Typha sp. CPC 33271 = CBS 145043, ex-neotype MK442590.1, MK442530.1, ‒ ‒, ‒, ‒ MK442666.1, MK442696.1, MK442734.1 Wojnowiciella dactylidis Nova Zelândia Dypsis sp. (Arecaceae) CPC 32741 = CBS 145077 = T16_03296B MK442631.1, MK442566.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, MK442724.1, MK442751.1 Xenodevriesia strelitziicola, gen. et comb.
nov. África do Sul Strelitzia sp. CBS 122480 = X1045, ex-tipo GU214635.1, GU214417.1, ‒ ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, ‒ Zasmidium hakeicola, sp. nov. Austrália Hakea corymbosa CPC 32703 = CBS 144590, ex-tipo MK442632.1, MK442567.1, MK442647.1 ‒, ‒, ‒ MK442687.1, ‒, MK442752.1 Zygosporium pseudogibbum Austrália Macrozamia miquelii CPC 32120 = CBS 144442 MK442633.1, MK442568.1, MK442648.1 ‒, ‒, ‒ ‒, ‒, MK442753.1
ATCC: American Type Culture Collection, Virgínia, EUA; CBS: Westerdijk Fungal Biodiversity Institute, Utrecht, Países Baixos; CPC: Coleção de culturas de Pedro Crous, depositada no CBS; dH: Coleção de culturas de Sybren de Hoog, depositada no CBS; IFO: Institute for Fermentation, Osaka, Yodogawa-ku, Osaka, Japão (coleção transferida para NBRC); IMI: International Mycological Institute, CABI-Bioscience, Egham, Bakeham Lane, Reino Unido; MFLUCC: Mae Fah Luang University Culture Collection, Chiang Rai, Tailândia.
ITS: espaçadores transcritos internos e 5.8S nrDNA interveniente; LSU: subunidade grande (28S) do operon do gene nrRNA; act: gene parcial da actina; cmdA: gene parcial da calmodulina; gapdh: gene parcial da gliceraldeído-3-fosfato desidrogenase; his3: gene parcial da histona H3; rpb2: gene parcial da segunda maior subunidade da RNA polimerase II dirigida por DNA; tef1: gene parcial do fator de elongação da tradução 1-alfa; tub2: gene parcial da beta-tubulina.